Sperm Hunter

Sperm Hunter



👉🏻👉🏻👉🏻 ALL INFORMATION CLICK HERE 👈🏻👈🏻👈🏻

































Magical, meaningful items you can’t find anywhere else.
Egg sperm hunter
(1 relevant result)
Yes! Send me exclusive offers, unique gift ideas, and personalized tips for shopping and selling on Etsy.
Please enter a valid email address.
Looks like you already have an account! Please Log in to subscribe.
You've already signed up for some newsletters, but you haven't confirmed your address. Register to confirm your address.
Здорово! Мы отправили вам электронное письмо для подтверждения подписки.
Возникла проблема при оформлении подписки для вас на этот новостной бюллетень.
  Россия   |   Русский   |   $ (USD)
Did you scroll all this way to get facts about egg sperm hunter? Well you're in luck, because here they come. There are 1 egg sperm hunter for sale on Etsy, and they cost 1,99 US$ on average.
Etsy uses cookies and similar technologies to give you a better experience, enabling things like:
Detailed information can be found in Etsy’s Cookies & Similar Technologies Policy and our Privacy Policy.
Some of the technologies we use are necessary for critical functions like security and site integrity, account authentication, security and privacy preferences, internal site usage and maintenance data, and to make the site work correctly for browsing and transactions.
These technologies are used for things like interest based Etsy ads.
We do this with marketing and advertising partners (who may have their own information they’ve collected). Saying no will not stop you from seeing Etsy ads, but it may make them less relevant or more repetitive. Find out more in our Cookies & Similar Technologies Policy.
Set where you live, what language you speak, and the currency you use. Learn more.
Австралия
Великобритания
Германия
Греция
Ирландия
Испания
Италия
Канада
Нидерланды
Новая Зеландия
Польша
Португалия
Россия
США
Франция
Япония
South Sudan
Австралия
Австрия
Азербайджан
Аланды
Албания
Алжир
Американское Самоа
Ангилья
Ангола
Андорра
Антарктида
Антигуа и Барбуда
Аргентина
Армения
Аруба
Афганистан
Багамы
Бангладеш
Барбадос
Бахрейн
Беларусь
Белиз
Бельгия
Бенин
Бермудские острова
Болгария
Боливия
Бонайре, Синт-Эстатиус и Саба
Босния
Ботсвана
Бразилия
Британская территория в Индийском океане
Британские Виргинские о-ва
Бруней Даруссалам
Буркина Фасо
Бурунди
Бутан
Вануату
Ватикан
Великобритания
Венгрия
Венесуэла
Виргинские о-ва (США)
Внешние малые острова (США)
Восточный Тимор
Вьетнам
Габон
Гаити
Гайана
Гамбия
Гана
Гваделупа
Гватемала
Гвинея
Гвинея-Биссау
Германия
Гернси
Гибралтар
Гондурас
Гонконг
Гренада
Гренландия
Греция
Грузия
Гуам
Дания
Джерси
Джибути
Доминиканская Республика
Египет
Заир
Замбия
Западная Сахара
Зимбабве
Израиль
Индия
Индонезия
Иордания
Ирак
Ирландия
Исландия
Испания
Италия
Йемен
Казахстан
Каймановы Острова
Камбоджа
Камерун
Канада
Канарские острова
Катар
Кения
Кипр
Кирибати
Китай
Кокосовые острова
Колумбия
Коморские о-ва
Конго
Косово
Коста-Рика
Кувейт
Кыргызстан
Кюрасао
Лаос
Латвия
Лесото
Либерия
Ливан
Ливия
Литва
Лихтенштейн
Люксембург
Маврикий
Мавритания
Мадагаскар
Майотта
Макао
Македония
Малави
Малайзия
Мали
Мальдивские о-ва
Мальта
Марокко
Мартиника
Маршалловы о-ва
Мексика
Микронезия
Мозамбик
Молдова
Монако
Монголия
Монсеррат
Мьянма
Мэн, о-в
Намибия
Науру
Непал
Нигерия
Нигерия
Нидерландские Антильские острова
Нидерланды
Никарагуа
Ниуе
Новая Зеландия
Новая Каледония
Норвегия
ОАЭ
Оман
Острова Зеленого Мыса
Острова Кука
Острова Тёркс и Кайкос
Острова Херд и Макдональд
Остров Буве
Остров Доминика
Остров Норфолк
Остров Рождества
Остров Святого Бартоломея
Остров Святого Мартина
Остров Святой Елены
Пакистан
Палау
Палестинские территории
Панама
Папуа – Новая Гвинея
Парагвай
Перу
Польша
Португалия
Пуэрто-Рико
Реюньон
Россия
Руанда
Румыния
Сальвадор
Самоа
Сан-Марино
Сан-Томе и Принсипе
Саудовская Аравия
Свазиленд
Свальбард и Ян-Майен
Северные Марианские о-ва
Сейшельские о-ва
Сенегал
Сен-Пьер и Микелон
Сент-Винсент и Гренадины
Сент-Киттс и Невис
Сент-Люсия
Сербия
Сербия и Черногория
Сингапур
Синт-Мартен
Словакия
Словения
Соломонские острова
Сомали
Судан
Суринам
США
Сьерра-Леоне
Таджикистан
Тайвань
Тайланд
Танзания
Того
Токелау
Тонга
Тринидад и Тобаго
Тувалу
Тунис
Туркменистан
Турция
Уганда
Узбекистан
Украина
Уоллис и Футуна
Уругвай
Фарерские о-ва
Фиджи
Филиппины
Финляндия
Фолклендские о-ва
Франция
Французская Гвиана
Французская Полинезия
Французские Южные Территории
Хорватия
ЦАР
Чад
Черногория
Чешская Республика
Чили
Швейцария
Швеция
Шри-Ланка
Эквадор
Экваториальная Гвинея
Эритрея
Эстония
Эфиопия
ЮАР
Южная Джорджия и Южные Сандвичевы Острова
Южная Корея
Ямайка
Япония
Deutsch
English (UK)
English (US)
Español
Français
Italiano
日本語
Nederlands
Polski
Português
Русский
$ United States Dollar (USD)
$ Canadian Dollar (CAD)
€ Euro (EUR)
£ British Pound (GBP)
$ Australian Dollar (AUD)
¥ Japanese Yen (JPY)
¥ Chinese Yuan (CNY)
Kč Czech Koruna (CZK)
kr Danish Krone (DKK)
$ Hong Kong Dollar (HKD)
Ft Hungarian Forint (HUF)
Rp Indonesian Rupiah (IDR)
₪ Israeli Shekel (ILS)
RM Malaysian Ringgit (MYR)
$ Mexican Peso (MXN)
DH Moroccan Dirham (MAD)
$ New Zealand Dollar (NZD)
kr Norwegian Krone (NOK)
₱ Philippine Peso (PHP)
$ Singapore Dollar (SGD)
₫ Vietnamese Dong (VND)
R South African Rand (ZAR)
kr Swedish Krona (SEK)
Swiss Franc (CHF)
฿ Thai Baht (THB)
NT$ Taiwan New Dollar (TWD)
₺ Turkish Lira (TRY)
zł Polish Zloty (PLN)
R$ Brazilian Real (BRL)

К. А. Алоян1, А. В. Матвеев1, В. В. Морев2, И. А. Корнеев1
1 Кафедра урологии Первого Санкт-Петербургского государственного медицинского университета им. акад. И. П. Павлова;
2 Международный центр репродуктивной медицины, Санкт-Петербург
В обзоре рассмотрены механизмы, обеспечивающие поступательное движение сперматозоидов. Подробно описаны различные механические и химические факторы, влияющие на подвижность сперматозоидов.
Ключевые слова: мужское бесплодие; астенозооспермия; подвижность сперматозоидов.
Подвижность сперматозоидов является ключевым фактором, влияющим на доставку отцовского генетического материала к яйцеклетке. Она обеспечивается компактным расположением структур сперматозоида и богатым арсеналом инструментов, позволяющих выполнять работу в изменяющихся условиях внешней среды. Сперматозоиды, образующиеся в яичке на первых этапах своего развития неподвижны, способность к перемещению у них развивается по мере созревания в придатке яичка и зависит от нормальной работы механизмов, управляющих хвостом (жгутиком), а также наличия внутренних и внешних энергетических ресурсов [1].
Механические принципы, обеспечивающие подвижность сперматозоида
Сперматозоиды состоят из двух заметно различающихся по строению частей — головки с гаплоидным набором хромосом и хвоста, в котором выделяют митохондриальную, основную и конечную части [1]. Хвост сперматозоида имеет структуру, которая позволяет производить асимметричные ритмичные движения в трех плоскостях. Аксонема, являющаяся центральной частью жгутика и обеспечивающая каркасную функцию, представляет собой цилиндрическую структуру и состоит из девяти внешних пар микротрубочек (A и B), связанных между собой нексиновыми мостиками и прикрепленных к центральной паре микротрубочек радиальными спицами. Эта структуру обозначают термином «конфигурация 9 + 2». Пары микротрубочек с внешней стороны прикреплены к плотным волокнам, формирующим цитоскелет аксонемы, окруженный митохондриями в средней части жгутика и покрытый фиброзным чехлом. Внешние волокна играют важную роль в обеспечении прямолинейного движения сперматозоидов: необходимо, чтобы площадь их поперечного сечения соответствовала длине хвоста. В основании жгутика имеется утолщение, состоящее из 9 сегментированных колонн, которые дис-тально расходятся и переходят в плотные волокна. Эта часть обеспечивает взаимодействие между головкой и хвостом при движении сперматозоида. В каждой паре микротрубочек под действием АТФ происходит реципрокное скольжение, обеспеченное последовательным закреплением динеиновых связей с аналогичной соседней парой. Динеин — это моторный протеин, который также называют молекулярным мотором, позволяет превращать химическую энергию АТФ в механическую энергию. Скольжение микротрубочек дает возможность изгибать жгутик сперматозоида в различных направлениях, а асимметричная структура аксонемы обеспечивает воронкообразную траекторию его движения. Подвижность сперматозоида активизируется после разрушения связей между наружными плотными волокнами и внутренней поверхностью митохондрий, обычно это происходит на этапе выхода сперматозоида из придатка яичка. Механизм, который является водителем ритма жгутика сперматозоида изучен недостаточно полно, возможно, что в его регуляции играет роль каннабиноидный рецептор CNR1.
Xимические реакции, обеспечивающие подвижность сперматозоида
Как и любая другая клетка, сперматозоид использует энергию аденозинтрифосфата (АТФ) для обеспечения жизнедеятельности: подвижности, 
акросомального экзоцитоза, работы ионных помп и каналов. Так как у сперматозоидов нет возможности запасать гликоген, они вынуждены синтезировать свои собственные молекулы АТФ из доступных субстратов [1]. В митохондриальной части жгутика происходит окислительное фосфорилиро-вание, АТФазы динеина используют энергию молекул АТФ для движения микротрубочек и жгутика. При этом АТФ гидролизируется до АДФ (адено-зиндифосфата), после чего происходит рефосфо-рилирование за счет переноса фосфатной группы от креатининфосфата, другой молекулы АДФ, или от 1,3-бисфосфоглицерата. Эти реакции катализируются с помощью ферментов креатинкина-зы, аденилаткиназы или 3-фосфоглицераткиназы и функционируют одновременно. В митохондриальной части жгутика образованные молекулы АТФ используются для поддержания подвижности сперматозоида или участвуют в реакциях фосфо-рилирования креатина, АМФ (аденозинмонофос-фата) или 3-фосфоглицерата. Эти ферменты поддерживают равновесную концентрацию субстрата и молекул АТФ, поэтому созданное таким образом химическое равновесие позволяет избежать потребности в диффузии молекул на большие расстояния. Известно также, что подвижность сперматозоидов сохраняется в анаэробных условиях: при нарушении окислительного фосфори-лирования, или при блокировании ингибиторами. Она обеспечивается за счет альтернативного механизма — путем гликолиза, который, очевидно, является ведущим способом образования молекул АТФ и поддержания двигательной активности сперматозоида [3].
Приобретение сперматозоидами способности к движению происходит постепенно по мере их созревания и продвижения от готовки придатка яичка к хвосту придатка. При этом определяется более чем шестикратное снижение уровня фермента киназы-3 гликогенсинтетазы (GSK-3). При обработке незрелых сперматозоидов головки придатка ингибиторами фосфатазы, такими как каликулин А или окадаевая кислота, их способность к движению повышалась без изменения уровня цАМФ (циклического аденозинмонофос-фата), рН и кальция [5]. За время прохождения созревания в придатке яичка в сперматозоидах происходит замена ферментативного аппарата, так как в отсутствии гликогена и в условиях лимитированной возможности запасать энергию в молекулах и химических связях, сперматозоидам приходится получать АТФ из окружающих доступных субстратов.
Активация подвижности сперматозоидов является кальций-зависимым процессом, для которого необходима щелочная среда и баланс между содержанием кальция (Ca2+) внеклеточного пространства и внутренних депо, расположенных у основания жгутика или акросомы [6, 7]. Для регуляции концентрации ионов Ca2+ существует несколько видов каналов: потенциалзависимые, цАМФ- и цГМФ-зависимые и другие. Они располагаются на плазматической мембране по всей поверхности жгутика. После входа Ca2+ в клетку происходит активация Са2+/кальмодулинового комплекса, который обеспечивает подвижность сперматозоидов через различные ферменты: аденилатциклазы, проте-инкиназы, фосфотазы и фосфодиэстеразы. При этом происходит увеличение количества цАМФ и фосфорилирования белков сперматозоида. Выдвинуто предположение, что в зависимости от концентрации Ca2+ происходит изменение направления движения сперматозоида под действием смены траектории колебания жгутика. После эякуляции сперматозоиды плывут практически по прямой линии, что связано с низкоамплитудным симметричным сокращением жгутиков. Это движение называется «активированная подвижность». В женских половых путях у сперматозоидов появляются высокоамплитудные асимметричные движения хвоста. Такая гиперактивированнная подвижность имеет важное значения для оплодотворения яйцеклетки. Гиперактивация сперматозоидов является кальций-зависимым процессом, управляемым специфическими Ca 2+ каналами, которые называются CatSper (катионный канал сперматозоида). Ca 2+/кальмодулин-зависимая Ca 2+АТФаза плазматической мембраны поддерживает межклеточный кальциевый гомеостаз [8].
Активация подвижности сперматозоидов и частоты вращения их жгутиков зависит от цАМФ. Эта молекула образуется при участии аденилатци-клазы sAC (SACY), которая, в свою очередь, стимулируется Ca2+ и HCO3-. По сравнению с жидкостью просвета канальца придатка яичка в семенной жидкости наблюдается более высокий уровень HCO3-, что приводит к ускорению движения сперматозоидов [9, 10]. цАМФ может способствовать повышению подвижности сперматозоидов через несколько регуляторных механизмов, в частности с помощью активации цАМФ-зависимой протеин киназы А (ПКА) или при обмене белков, активированных с цАМФ [1].
По мере продвижения сперматозодидов по придатку яичка изменяются химические характеристики окружающей их среды. Светлые клетки канальцев придатка яичка регулируют кислотность жидкости в просвете канальцев и поддерживают сперматозоиды в неподвижном состоянии за счет секреции бикарбонатов и аккумуляции ионов водорода с помощью протон-секретирующей V-АТФазы [11, 12].
Для процесса активации сперматозоидов необходима нейтральная среда с pH 7,0, а гиперактивация происходит в условиях щелочной среды с pH в диапазоне от 7,9 до 8,5 [13]. Таким образом, щелочная среда играет двойную роль в поддержании процесса гиперактивации, потому что, во-первых, она напрямую стимулирует гиперактивированную подвижность, а во-вторых, способствует активации CatSper-каналов [14, 15]. Натрий-водородный канал сперматозоидов (SLC9A10) — это катион-протонный антипорт, который учувствует в активизации и поддержании щелочных условий для сперматозоидов во время капацитации [16]. С помощью иммуногистохимического исследования удалось обнаружить, что SLC9A10-каналы располагаются в основной части жгутика [17]. При отсутствии SLc9a10 гена у мышей мужского пола отсутствует подвижность сперматозоидов при нормально протекающем сперматогенезе [17].
Слабый обратный ток ионов калия через чувствительные К+-каналы сперматозоидов (KSper) создает отрицательный мембранный потенциал, благодаря чему увеличивается вход кальция через CatSper-каналы [18]. Известно, что К+-каналы активизируются в щелочной среде. При делеции гена Kcnu1 у самцов мышей нарушается работа KSper-каналов, что приводит к нарушению подвижности сперматозоидов и изменению формы жгутика в виде «шпильки» [19, 20].
Доказано, что очень низкие концентрации некоторых белковых молекул являются достаточными для изменения направления движения сперматозоидов. Связь с такой молекулой приводит к повышению концентрации циклических внутриклеточных регуляторов подвижности
и ионов Ca2+, что вызывает изгиб жгутика и изменение траектории. Несмотря на некоторые противоречия в полученных данных, доказано, что в качестве хемоаттрактантов могут выступать различные молекулы: N-формилированные ароматические соединения [21], предсердный на-трийуретический пептид [22], прогестерон [23] и хемокин, экспрессируемый и секретируемый T-клетками при активации [24]. Установлено, что буржонал — ароматический альдегид, используемый в парфюмерии — также стимулирует хемотаксис сперматозоидов [25]. Аналогичные результаты, подтверждающие хемотаксис, были получены у мышей для лирала [26]. Обычно сперматозоиды движутся линейно с симметричным биением жгутиков, при хемотаксисе направление движения меняется к источнику хемоаттрактан-тов на фоне изменения формы траектории вращения жгутика [27, 28].
Исследования также показали, что по ходу маточной трубы млекопитающих существует температурный градиент от более низкой температуры в истмическом отделе до более высокой — в ампулярном [29, 30]. Эти данные позволили предположить, что изменение температуры также служит дополнительным ориентиром, способствующим продвижению сперматозоидов по женским половым путям [31-35].
Термотаксис и хемотаксис дополняют друг друга, работая в разных отделах маточных труб: первый способствует продвижению сперматозоидов в истмическом отделе, а второй — в ампулярном [33].
Подвижность сперматозоидов снижается при повышении вязкости окружающей их среды. Исследования вязкости жидкости в женских половых путях показали, что это переменная величина, значение которой зависит от целого ряда факторов. Установлено, что градиент вязкости принимает участие в формировании траектории движения сперматозоида. Кроме того, описаны механизмы взаимодействия ворсинчатого эпителия со сперматозоидами, позволяющие им сохранять в условиях повышенной вязкости прямолинейное направление движения [36]. Реотаксис, а именно способность ориентирования и движения сперматозоидов против течения жидкости в женских половых путях, является важным фактором, обеспечивающим успех оплодотворения. Для осуществления реотакисиса необходимы вращательные движения, позволяющие развивать достаточную силу для продвижения в потоке жидкости. Для этого необходимы CatSper- каналы, которые вызывают Ca 2+-зависимую гиперактивацию [37].
При созревании сперматозоиды приобретают способность регулировать клеточный объем, которая играет важную роль в обеспечении их подвижности. У сперматозоидов есть механизмы защиты от увеличения размеров при изменении осмолярности среды во время перехода из яичка в придаток яичка. В них задействованы регуляторы концентрации L-карнитина и аминокислот [38]. Кроме того, эти механизмы включаются после семяизвержения, когда сперматозоиды оказываются в окружении гипоосмотической среды женских половых путей. При этом происходит высвобождение жидкости и осмотически активных веществ, поглощенных в придатке яичка. Нарушения работы механизмов регуляции осмотической защиты могут приводить к аномальному увеличению размеров головки сперматозоида или искривлению его хвоста, негативно сказывающихся на способностях к перемещению.
Активные формы кислорода (АФК) и, в частности, пероксид водорода, вырабатываются сперматозоидами и лейкоцитами семенной жидкости и имеют дозозависимый эффект на подвижность сперматозоидов. Низкий уровень АФК через активацию цАМФ может способствовать активации подвижности, высокие концентрации АФК оказывают ингибирующее действие, так как ускоряют перекисное окисление липидов плазматической мембраны [39]. Экспозиция к тяжелым металлам (Al, Cr, Cd, Pb, Fe) также относится к факторам, негативно влияющим на подвижность сперматозоидов, тогда как воздействие Zn, Mg и Ca может защитить от окcидативного стресса [40-46].
Таким образом, в настоящее время установлено, что подвижность сперматозоидов зависит от большого числа разнообразных факторов, имеющих сложные механизмы регуляции. Снижение подвижности сперматозоидов может приводить к астенооспермии и быть причиной мужского бесплодия.
1. Mariano G. Buffone, Takashi W. Ijiri, Wenlei Cao et al. Heads or tails? structural events and molecular mechanisms that promote mammalian sperm acrosomal exocytosis and motility // Mol Reprod Dev. 2012. Vol. 79, N 1. P. 4-18.
2. Kazuo I. Sperm flagella: comparative and phylogenetic perspectives of protein components // Molecular Human Reproduction. 2011. Vol. 17, N 8. P. 524-538.
3. Ford W. C. L. Glycolysis and sperm motility: does a spoonful of sugar help the flagellum go round? // Human Reproduction Update. 2006. Vol. 12, N 3. P. 269 -274.
4. Vijayaraghavan S., Stephens D.T., Trautman K. et al. Sperm motility development in the epididymis is associated with decreased glycogen synthase kinase-3 and protein phosphatase 1 activ
Реплейсер Следов Спермы для SexLab - Разное - Adult Mods Localized | Форум
Egg sperm hunter | Etsy
Физиологические механизмы обеспечения подвижности сперматозоидов
Speedrunner VS Hunter Minecraft Data Pack
Sperm Hunter / смешные картинки и другие приколы: комиксы, гиф анимация...
Sex Lesbian Hard
Megan Albertus Nude
Jenna Gering Nude
Sperm Hunter

Report Page