Рим купить Марки LSD 170мкг

______________

✅ ️Наши контакты (Telegram):✅ ️

>>>🔥🔥🔥(ЖМИ СЮДА)🔥🔥🔥<<<

✅ ️ ▲ ✅ ▲ ️✅ ▲ ️✅ ▲ ️✅ ▲ ✅ ️

ВНИМАНИЕ!!!

ИСПОЛЬЗУЙТЕ ВПН, ЕСЛИ ССЫЛКА НЕ ОТКРЫВАЕТСЯ!

В Телеграм переходить только по ССЫЛКЕ что ВЫШЕ, в поиске НАС НЕТ там только фейки !!!

______________

Рим купить Марки LSD 170мкг

Рим купить закладку Марки LSD 170мкг

Рим купить Марки LSD 170мкг

Страницы: 1 2. Страницы: 1 2 4. С цена деления шкалы 1 град. Питательные среды: Для определения количества мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов ТУ Питательный бульон ТУ Питательные среды для определения ТУ энтеробактерий ГОСТ Среды для определения дрожжей и ТУ микроскопических грибов агар Сабуро, сывороточный и др. ГОСТ Штаммы ГММ, штамм-реципиент, контрольный референтный штамм того же вида, что и ГММ Контрольные референтные штаммы, представляющие основные виды резидентной микрофлоры человека: Грамположительные облигатно-анаэробные бактерии Лактобактерии Бифидобактерии Пептострептококки Грамотрицательные облигатно-анаэробные бактерии Бактероиды Факультативно-анаэробные микроорганизмы Кишечная палочка Стафилококки Стрептококки Дрожжеподобные грибы рода Candida Контрольные штаммы, используемые в настоящем разделе, должны иметь паспортные данные и принадлежать к Американской типовой коллекции культур АТСС или получены из музея живых культур Государственного НИИ стандартизации и контроля медицинских биологических препаратов им. Допускается использование других разрешенных питательных сред и диагностических тест-систем аналогичного назначения для проведения исследований фенотипических свойств в соответствии с данным документом. При их применении необходимо руководствоваться рекомендациями изготовителя. Питательные среды и биологические препараты импортного производства должны иметь сертификат качества ИСО или EN Питательные среды и препараты отечественного производства должны соответствовать нормативной документации, утвержденной в установленном порядке. Одновременно осуществляют посевы на селективные питательные среды в разведениях для точного подсчета клеток каждого вида микроорганизма. Например, для точного подсчета количества клеток стафилококков посев осуществляется на желточно-солевой агар при дальнейшем культивировании при 37 град. С в течение 48 часов в аэробных условиях, в то время как для определения количества клеток бифидобактерий взвесь микроорганизмов высевается на модифицированную среду Блоурока, а культивирование производят в анаэробных условиях при 37 град. С в течение 48 часов. Через 6 и 24 часа осуществляют посевы на селективные питательные среды и подсчитывают число клеток представителя резидентной микрофлоры и ГММ. Контролями служат посевы, в которых выращивается только представитель резидентной микрофлоры или ГММ. Вычисляется число клеток представителя резидентной микрофлоры, выращенного в присутствии ГММ и отдельно. При приблизительно одинаковом соотношении числа выросших клеток отдельно и в присутствии ГММ можно считать, что ГММ не обладает антагонистическим действием. При более высоких показателях числа выросших клеток обоих видов, чем при выращивании каждого из представителей в отдельности, можно констатировать, что оба вида характеризуются симбиотическим действием. При превышении количества клеток представителя резидентной микрофлоры в 5 и более раз, выращенного без ГММ, чем в смеси с ГММ, можно полагать антагонистическое действие ГММ на конкретного представителя нормальной микрофлоры кишечника. В случае, если такое антагонистическое действие ГММ проявляется ко всем или большинству из исследованных представителей нормальной микрофлоры кишечника человека, делается заключение о невозможности его использования в производстве пищевых продуктов. При выявлении антагонистического действия ГММ к 1 - 2 представителям нормальной микрофлоры кишечника человека требуются дополнительные исследования, включающие исследование антагонистической активности ГММ и штамма-реципиента с представителями резидентной микрофлоры кишечника человека in vivo, молекулярно-генетические исследования по выявлению генов, детерминирующих данный феномен. Молекулярно-генетическая оценка ГММ, используемых для производства пищевой продукции Необходимость проведения тех или иных исследований по данному разделу и для каждого конкретного вида пищевой продукции, полученной с использованием ГММ, определяется экспертом центра по микробиологической и молекулярно-генетической экспертизе ГММ при ГУ НИИЭМ им. Гамалеи РАМН. Эксперт обязан проанализировать представленную заявителем документацию, соответствующие базы данных в т. Для подтверждения таксономического положения штамма заявитель должен представить информацию об уровне гомологии ГММ в случае необходимости штаммов - донора и реципиента с штаммами этого вида, допущенными для использования в пищевой промышленности при создании аналогичной продукции. Sneaht P. Baltimore; Williams and Wilkins, V. Заявитель поставщик должен представить информацию о нуклеотидной последовательности генной вставки, а также материалы, отражающие молекулярно-биологические характеристики ГММ см. Поэтому экспертные исследования штаммов ГММ должны включать, с одной стороны, подтверждение природы штамма-реципиента и целевой вставки чужеродной ДНК согласно представленной заявителем документации , а с другой стороны, выявлять наличие возможных генетических модификаций, не указанных в документации. Рекомендуемые стратегии выявления генетических модификаций предлагают использовать для этих целей наиболее часто употребляемые векторные последовательности: селективные гены гены антибиотикорезистентности, бактериоцинов или ауксотрофные селективные маркеры , неэкспрессируемые последовательности полилинкеры, промоторы или терминаторы , а также последовательности мигрирующих элементов. Обнаружение таких последовательностей будет свидетельствовать о возможных незадокументированных генетических модификациях, что потребует проведения дополнительных исследований штаммов ГММ. С точки зрения безопасности пищевые ГММ не должны содержать гены антибиотикорезистентности, встроенная ДНК не должна кодировать выработку потенциально опасных веществ, а векторы класса food-grade должны быть сконструированы таким образом, чтобы свести к минимуму вероятность передачи нового генетического материала другим микроорганизмам. Проведение дополнительных исследований может потребовать использования таких методов, как различные виды гибридизационного и рестрикционного анализа, секвенирование, анализ функционирования вставки ОТ-ПЦР и изучение продукции белка чужеродной ДНК. Однако основным скрининговым методом является полимеразная цепная реакция - ПЦР. Специально подобранные пары праймеров будут использованы как для проверки целевого гена, так и для последовательностей, свидетельствующих о возможных генетических модификациях. В настоящее время методы молекулярной биологии, основанные на ПЦР-анализе, находят все более широкое применение в целях диагностики и экспресс-анализа разнообразного биологического материала. Преимущество подобных методик обусловлено высокой чувствительностью и специфичностью ПЦР, совместимостью ПЦР-анализа с дополнительными методами исследования секвенирование, рестрикционный и гибридизационный анализы амплифицированных фрагментов, изучение информационных РНК ОТ-ПЦР и транслируемого ими белкового продукта. Достоинством ПЦР-анализа являются также высокая воспроизводимость результатов, технологичность проведения анализа в сочетании с доступностью и сравнительно невысокой стоимостью оборудования для организации ПЦР-лабораторий. Метод идентификации целевых генов, неэкспрессируемых последовательностей и селективных маркеров, а также подтверждение видовой принадлежности штамма при помощи ПЦР 5. Создание электронной базы данных Для полной и надежной идентификации конкретного ГММ необходимо создать электронную базу данных о целевых, селективных и маркерных генах, мигрирующих элементах, неэкспрессируемых последовательностях и регуляторных элементах, а также векторных конструкциях класса food-grade, которые используются при создании ГММ. В такую базу данных должна быть включена информация о видоспецифических генах, которые могут быть использованы для подтверждения таксономической принадлежности штамма. Также в базу данных должны быть включены сведения о наличии в коллекциях штаммов ГММ, принадлежащих к 1, 2 и 3 классу безопасности, в различных странах. Особое внимание при создании электронной базы данных следует уделить информации о так называемых GRAS generally recognized as safe микроорганизмах, которые чаще всего используются как доноры генетической информации при конструировании ГММ. Выбор праймеров должен осуществляться в соответствии с правилами молекулярного дизайна. Для выбора праймеров должны быть использованы программы Primer, Oligo или другие аналогичные программы, позволяющие осуществлять многофакторный анализ выбранных последовательностей. Должен быть произведен сравнительный анализ выбранных олигонуклеотидов с помощью программы Blast для исключения наличия областей гомологии с ДНК родственных и неродственных видов. Конкретный набор тех или иных праймеров для проведения экспертизы должен определяться таксономической принадлежностью штамма; информацией о его генетическом статусе и характере генетических модификаций, предоставленной заявителем; а также характера и места использования ГММ в технологии получения пищевых продуктов и вероятности попадания живых ГММ в организм человека см. Выбор условий проведения ПЦР Условия проведения реакции определяют степень точности и воспроизводимости результатов, и их отработка должна производиться для каждой конкретной пары праймеров. Выбор условий проведения ПЦР включает подбор оптимального соотношения компонентов реакционной смеси, структуры программы амплификации временных и температурных характеристик каждого этапа амплификации и адекватного метода детекции результатов. Выбор оптимальных условий проведения ПЦР обеспечивает высокий уровень чувствительности и специфичности прохождения реакции, исключающий наличие перекрестных реакций с неспецифическими ДНК. С, для пробирок объемом 1,5 мл Центрифуга со скоростью вращения ротора - об. С Пипетки полуавтоматические одноканальные со сменяемыми наконечниками на 1 - 10, 5 - 40, 40 - , - мкл типа 'Ленпипет' 5. Лабораторная посуда и материалы Пробирки типа 'Эппедорф' вместимостью 1,5 мл, совместимые с центрифугой Пробирки типа 'Эппедорф' вместимостью 0,5 мл, совместимые с амплификатором Наконечники пластиковые на 1 - мкл к пипеткам полуавтоматическим Наконечники пластиковые на - мкл к пипеткам полуавтоматическим Перчатки резиновые ГОСТ Колбы плоскодонные конические разной вместимости ГОСТ Штативы для пробирок 5. Реактивы Допускаются к использованию реактивы производства различных отечественных и зарубежных фирм, прошедшие государственную регистрацию и разрешенные для использования в установленном порядке. Приготовление основных растворов 1 М Трис рН-7,5. Растворить ,1 г Трис в мл воды. Довести рН до необходимого значения добавлением концентрированной HCl и довести объем до 1 л. Раствор простерилизовать. К ,1 г ЭДТА добавить мл воды. Довести рН до 8,0 NaOH. Довести рН до 7,2 добавлением нескольких капель концентрированной НСl и довести до мл. При взвешивании SDS наденьте на лицо маску, так как при попадании на слизистую оболочку носоглотки этот летучий порошок вызывает сильное раздражение. После этого комплекс бактериальных белков и обломков клеточной стенки осаждают добавлением мкл 2,55 М ацетата калия при энергичном встряхивании на вортексе в течение 5 мин. Затем смесь центрифугируют в течение 5 - 10 мин. Надосадочную жидкость переносят в пробирку объемом 1,5 мл, содержащую 0,75 мл смолы марки Wizzard. Мини-колонку помещают в стерильную пробирку объемом 1,5 мл, наносят в миниколонку 50 мкл стерильной бидистиллированной или деионизованной воды и прогревают пробирку с колонкой 5 мин. Затем мини-колонку в пробирке помещают в центрифугу и центрифугируют 1 мин. Описанным способом получают порядка 5 мкг ДНК размером от 3 до 15 т. Полученные препараты ДНК сохраняются при минус 70 град. С и используются для анализа методом ПЦР. При условии использования стерильных растворов и посуды получаемая ДНК может храниться при плюс 4 град. С в течение полугода. Срок хранения препаратов ДНК при минус 20 град. С превышает 2 года. Для проведения ПЦР используется термостабильная Taq-полимераза, соответствующий ей десятикратный ПЦР-буфер, растворы четырех дезоксирибонуклеотидтрифосфатов и выбранной пары праймеров. В типичных экспериментах реакционную смесь объемом 50 мкл составляют так, чтобы она содержала нг геномной ДНК, 1,5 мМ каждого из четырех дезоксирибонуклеотидтрифосфатов, 1 ед. Затем к реакционной смеси добавляют 30 пкМ пары олигонуклеотидных праймеров в буферном растворе следующего состава: 67 мМ Трис-HCl буфер рН 8,0 при 25 град. Далее на каждую пробу наслаивают по 50 мкл минерального масла и реакцию проводят по специально подобранным программам в многоканальном амплификаторе ДНК. При необходимости возможно проведение мультиплексной ПЦР для анализа нескольких важных фрагментов вставки, а также второго раунда ПЦР с внутренней парой праймеров nested PCR для повышения специфичности реакции. Окрашивание фрагментов ДНК осуществляется этидиум бромидом. Анализ результатов и фотографирование электрофореграммы осуществляют в условиях ультрафиолетовой подсветки на трансиллюминаторе. Фотоотпечатки или оттиски, выполненные на лазерном принтере с разрешением не менее точек на дюйм, должны быть приложены к протоколу проведения испытаний. Дополнительные методы идентификации генетического материала ГММ Дополнительными и уточняющими методами идентификации генетической информации в штаммах ГММ являются рестрикционный анализ амплифицированных фрагментов ДНК, а также метод определения их нуклеотидной последовательности секвенирование. Аппаратура и инструментарий Допускаются к использованию аппаратура и инструментарий производства различных отечественных и зарубежных фирм, прошедшие государственную регистрацию и разрешенные для использования в установленном порядке. Весы аналитические. Планшетный ридер rider. Планшетный вошер wosher. Прибор для проведения электрофореза. Прибор для проведения иммуноблоттинга. Источник тока. Термостатируемый шейкер. Центрифуга настольная типа 'Эппендорф'. Холодильник бытовой. Компьютер, монитор, сканер, принтер. Пипетки многоканальные и одноканальные с переменным объемом. Методы оценки экспрессии целевого гена Оценка экспрессии встроенного целевого гена осуществляется на двух уровнях. Первый уровень - транскрипционный. Второй уровень - трансляционный. С и 10 мин. Затем проводили реакцию обратной транскрипции в общем объеме 20 мкл. Реакцию проводили 30 мин. Далее эту смесь анализировали с помощью полимеразной цепной реакции методика проведения ПЦР описана в разделе 5. Определение белка, экспрессируемого целевым геном ГММ, методом электрофоретического разделения в ПААГ-ДСН Цель метода - сравнительный анализ белкового состава и определение молекулярной массы полипептида, экспрессируемого целевым геном. Для проведения анализа используют следующие оборудование и реактивы. Электрофоретическая камера и источник питания типа 'Биорад' или аналоги. Проведение электрофореза I. Приготовление гелевой пластинки: - вымыть части прибора в детергенте; - промыть дистиллированной водой; - смонтировать установку для заливки гелей; - внести разделяющий гель, полимеризация 30 мин. После полимеризации 10 мин. Гель можно хранить в полиэтилене, целлофане при температуре 4 град. С; использовать в течение 4 дней. С 5 минут. Электрофорез: - поместить гелевую пластину в камеру; - заполнить камеры буфером; - нанести образцы микрошприцем; - включить источник питания; - условия: сила тока - 20 мА на пластину; - образцы концентрируются на анодном конце, затем разделяются по молекулярной массе на основе эффекта молекулярного сита. Окраска геля По окончании электрофореза гель вынуть из кассеты, поместить в камеру для окраски. Окраска согласно протоколу, прилагаемому к реагенту ERZ Blue. Хранение Для консервации применяют высушивание геля между целлофановыми пленками. Для сохранения данного изображения гель фотографируют в видимом спектре или сканируют. Определение специфичности белка, экспрессируемого целевым геном ГММ, методом иммуноблоттинга Цель метода - идентификация экспрессируемого полипептида с помощью специфических моноклональных антител. Метод позволяет определять идентичность синтезируемого белка продукту целевого гена, указанного заявителем. Электрофоретическая камера, камера для переноса и источник питания типа 'Биорад' или аналоги. Реактивы производства фирм, прошедших государственную регистрацию и разрешенных к использованию в установленном порядке. Проведение иммуноблоттинга I. Перенос белков После электрофоретического разделения образца в ПААГ-ДСН осуществляют перенос белков из пластин геля на нитроцеллюлозную мембрану методом электропереноса в 'полусухой' буферной системе. При сборке системы следят, чтобы между слоями не было пузырьков воздуха. Размер листов фильтровальной бумаги и нитроцеллюлозных фильтров должен соответствовать размеру геля. Перенос проводят при постоянном токе мА в течение 1,5 часов при комнатной температуре. С, затем 30 мин. Последующие стадии обработки фильтров включают: - инкубацию с моноклональными антителами; - с антивидовым иммунопероксидазным конъюгатом; - окрашивание мембраны. Условия инкубации на каждой стадии: 1 час на шейкере при 37 град. Проявление зон осуществляют субстратным раствором пероксидазы бета-хлорнафтол, диаминобензидин. Реакцию окрашивания останавливают промыванием мембраны в воде. После высушивания окрашенные реплики сканируют. Реакцию проводят по протоколу фирмы 'Promega' в 3 стадии: 1. Инкубировать 30 минут на 37 град. С, затем активность фермента T4-Kinase останавливают повышением температуры до 90 град. С в течение 2 минут. В заранее подготовленные 4 пробирки, содержащие ddNTP, 50 мМ NaCl, раскапывают по 4 мкл реакционной смеси, сверху наслаивают вазелиновое масло и проводят амплификацию. Реакция проходит в следующих условиях: плавление цепей - 95 град. С - 0,5 мин. С - 1 минута. Продолжительность амплификации составляет 30 циклов. Электрофорез Полученные образцы прогревают 2 минуты при 70 град. В каждый слой геля наносят по 3 мкл соответствующего образца. Экспонирование с рентгеновской пленкой 'Кодак' проводят в течение 15 - 48 часов при комнатной температуре. Рестрикционный анализ ампликонов Рестрикционный анализ проводят с помощью гидролиза ДНК специфическими эндодезоксирибонуклеазами рестриктазами с последующим фракционированием в агарозном геле. Выбор рестриктаз определяется наличием специфических сайтов рестрикции в синтезированных ампликонах. Гидролиз ДНК специфическими эндодезоксирибонуклеазами Для гидролиза ДНК рестриктазами используют буферные смеси с низкой, средней и высокой ионной силой, согласно рекомендациям фирм - производителей этих ферментов. Время инкубации составляет от 1 до 4 часов при 37 град. Гели с разделенными фрагментами фотографируют в УФ-свете на пленку 'Микрат' с использованием оранжевого светофильтра или осуществляют видеодетекцию полученной на трансиллюминаторе картины. Электрофоретическая камера и источник питания. Приготовление гелевой пластинки: - вымыть части прибора в детергенте; - ополоснуть дистиллированной водой; - смонтировать установку; - внести разделяющий гель, полимеризация 30 мин. С 3 минуты. Электрофорез: - поместить гелевую пластину в камеру; - заполнить камеры буфером; - нанести образцы микрошприцем; - включить источник питания; - условия: ток - 20 мА на пластину; - образцы концентрируются на анодном конце, затем разделяются по молекулярному весу на основе эффекта молекулярного сита. Окраска По окончании электрофореза гель вынуть из кассеты, поместить в камеру для окраски. Иммуноблоттинг Western-blotting Immunoassay Метод иммуноблоттинга позволяет с помощью специфических моноклональных антител определять идентичность синтезируемого белка продукту целевого гена, указанного заявителем. Обработка мембраны. Последующие стадии обработки фильтров включают: - инкубацию с моноклональными антителами поликлональными антителами ; - с антивидовым иммунопероксидазным конъюгатом; - окрашивание мембраны. Определение ДНК ГММ в готовых продуктах питания Полная микробиологическая и молекулярно-генетическая, медико-биологическая и технологическая оценка ГММ проводится для пищевых продуктов 1 группы см. Такая оценка предусматривает наряду с анализом документации как исследования культур ГММ таксономии и свойств доноров, реципиентов, самих ГММ, последовательностей генных вставок, наличия биомаркеров и т. Для продукции, относимой ко второй группе само по себе длительное использование которой в питании населения без вреда для здоровья является одним из свидетельств безопасности , основными подходами могут быть микробиологическая и молекулярно-генетическая оценка образцов готовых продуктов идентификация ДНК генной вставки, наличие селективных маркеров или маркеров генной модификации векторных генов, линкеров и т. Стандартно принятыми методами для определения наличия чужеродного генетического материала в продуктах являются иммунологический анализ и выявление ДНК ГММ при помощи ПЦР. Критерием в пользу выбора ПЦР как метода анализа является высокая чувствительность метода, превосходящая как минимум на два порядка чувствительность известных иммунологических методов. Помимо этого, ПЦР является гораздо менее дорогим и более стабильным методом, чем другие методы анализа. Немаловажным достоинством ПЦР является то, что используемые в реакции синтетические олигонуклеотиды при правильном их выборе могут быть применены для проведения анализов различных ГММ, что в случае иммунологических методов невозможно. При повышенном содержании жиров проводится дополнительная экстракция суспензией неполярных растворителей с водой. Это позволяет перевести содержащуюся в пищевом продукте ДНК в водную фазу, в которой и производится дальнейшая очистка. Вторым критерием отбора методик явилось требование минимизации времени, затрачиваемого на выделение одного препарата ДНК. Смесь тщательно перемешивают и инкубируют 20 - 30 мин. Охлаждают до 4 град. С, добавляют 0,3 мл 5 М ацетата калия, перемешивают в вортексе и центрифугируют 10 мин. К надосадку добавляют 1 мл смолы Wizard MaxiPreps и инкубируют смесь 10 мин. Добавляют в мини-колонку 50 мкл дистиллированной воды, подогретой до 65 град. Инкубируют мини-колонку с водой 10 мин. С, центрифугируют об. В зависимости от содержания ДНК в конкретном пищевом продукте на проведение единичной полимеразно-цепной реакции в объеме 50 мкл требуется от 2 до 20 мкл полученного препарата ДНК. Образцы пищевых продуктов с повышенным содержанием масла перед выделением ДНК требуется подвергнуть дополнительной экстракции эмульсией хлороформа в воде. Для этого 0,5 г исследуемого продукта гомогенизируют в смеси 0,5 мл буфера А и 0,5 мл хлороформа и инкубируют гомогенат 20 мин. Затем охлаждают его до 4 град. С и центрифугируют 10 мин. Водную фазу собирают и переносят в чистую пробирку. Далее продолжают, начиная с пункта 2 вышеизложенной методики. Выбор праймеров для проведения ПЦР Для точного определения наличия ДНК вставки в штаммах ГММ фирмой-заявителем должна быть представлена информация о нуклеотидной последовательности целевого гена и его регуляторных элементов, а также о структурных элементах и маркерах вектора. Это требование вводится для того, чтобы можно было точно идентифицировать наличие конкретной генетической конструкции. В таком случае синтетические олигонуклеотиды для проведения ПЦР будут синтезированы таким образом, чтобы выявить факт наличия генетических модификаций. Длина используемых при анализе специфических праймеров должна составлять не менее 20 пар нуклеотидов с целью избежания появления в результате ПЦР неспецифических продуктов реакции. В случае, когда подобная информация по каким-то причинам не может быть представлена например, фирма - изготовитель продуктов питания закупает используемые в технологическом процессе штаммы микроорганизмов у специализированного производителя , необходимо проводить проверку на присутствие в выделяемой из тестируемой продукции ДНК наборами праймеров, позволяющими подтвердить видовую идентификацию штамма и выявить наличие возможных генетических модификаций. Обнаружение таких последовательностей будет свидетельствовать о возможных незадокументированных генетических модификациях, что потребует проведения дополнительных исследований, подтверждающих или опровергающих это предположение. Выбор условий проведения ПЦР Для ПЦР-анализа ДНК, выделенной из продуктов питания, подбираются оптимальные условия проведения реакции для каждой конкретной пары праймеров, обеспечивающие максимальную чувствительность и специфичность анализа, исключающую наличие перекрестных реакций с неспецифическими ДНК. Продовольственное сырье - сырье растительного, животного, микробиологического, минерального и искусственного происхождения и вода, используемые для изготовления пищевых продуктов. Качество пищевых продуктов - совокупность характеристик пищевых продуктов, способных удовлетворять потребности человека в пище при обычных условиях их использования. Безопасность пищевых продуктов - состояние обоснованной уверенности в том, что пищевые продукты при обычных условиях их использования не являются вредными и не представляют опасности для здоровья нынешнего и будущих поколений. Удостоверение качества и безопасности пищевых продуктов - документ, в котором изготовитель удостоверяет соответствие качества и безопасности каждой партии пищевых продуктов требованиям нормативных, технических документов. Нормативные документы - государственные стандарты, санитарные и ветеринарные правила и нормы, устанавливающие требования к качеству и безопасности пищевых продуктов, контролю за их качеством и безопасностью, условиям их изготовления, хранения, перевозок, реализации и использования, утилизации или уничтожения некачественных, опасных пищевых продуктов, материалов и изделий. Технические документы - документы, в соответствии с которыми осуществляются изготовление, хранение, перевозка и реализация пищевых продуктов, материалов и изделий технические условия, технологические инструкции, рецептуры и др. Генная инженерия - совокупность методов и технологий, в т. Генно-инженерная деятельность - деятельность, осуществляемая с использованием методов генной инженерии и генно-инженерно-модифицированных генно-модифицированных организмов. Генетически модифицированный организм ГМО - организм или несколько организмов, любые неклеточные, одноклеточные или многоклеточные образования, способные к воспроизводству или передаче наследственного генетического материала, отличные от природных организмов, полученные с применением методов генной инженерии и содержащие генно-инженерный материал, в т. Генетически модифицированный микроорганизм ГММ - микроорганизмы бактерии, дрожжи и др. Скурихина и В. Швейцария, Маниатис Т. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. Остерман Л. Хроматография белков и нуклеиновых кислот. Наука, Laemmly U. Blum H. Ohnashi T. Towbin H. USA, Bredford M. MacCormick C. Gasson M. Koning W. Pridmore R. Romanos M. McKay L. Update on dairy starter cultures: genetics and biotechnology of dairy streptococci. Lindemann J. Holst-Jensen A. Методические указания по определению остаточных количеств антибиотиков в продуктах животноводства. Волгарева М. Трахтенберг И. Показатели нормы у лабораторных животных в токсикологическом эксперименте. Тиц Н. Энциклопедия клинических лабораторных тестов. Показатели нормы у лабораторных животных. Фонштейн Л. Методы первичного выявления генетической активности загрязнителей среды с помощью бактериальных тест-систем: Методические указания. Kaufman Р. Гринберг К.

Арыс купить каннабис

Купить закладку наркотиков Киреевск

Рим купить Марки LSD 170мкг

Hydra купить кокс Серов

Hydra купить наркотики Чадан

Купить Мет, метамфа в Намангане

whiteoffsh whiteoffsh

Пула купить закладку экстази

Закладки мефедрона Мураши

Рим купить Марки LSD 170мкг

Купить наркотики Бенони

Как купить Конопля через интернет Томск

Звание: Новичок Cообщений: нет информации. Дата рождения: нет информации. Наименование компании: нет информации. Детские достижения 10 лет 'Боулинг Алекс' Боулинг-юмор. Личные данные. Информация о работе. Показать все темы автор Показать все темы участник Показать все сообщения.

Рим купить Марки LSD 170мкг

Hydra купить ск скорость a-PVP Йоханнесбург

Лесосибирск купить гашиш

Дагестанские Огни купить закладку ганджубаса