Пробы Экстази, Лсд 25 Анси
Пробы Экстази, Лсд 25 АнсиПробы Экстази, Лсд 25 Анси
≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈
Гарантии! Качество! Отзывы!
Проверенный магазин!
≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈
▼▼ ▼▼ ▼▼ ▼▼ ▼▼ ▼▼ ▼▼ ▼▼ ▼▼
Наши контакты (Telegram):☎✍
>>>✅(НАПИСАТЬ ОПЕРАТОРУ В ТЕЛЕГРАМ)✅<<<
▲▲ ▲▲ ▲▲ ▲▲ ▲▲ ▲▲ ▲▲ ▲▲ ▲▲
≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡
⛔ ВНИМАНИЕ!
📍 ✅✅✅ Используйте ВПН, если ссылка не открваеться !!!
📍 В Телеграм переходить только по ССЫЛКЕ что ВЫШЕ! В поиске НАС НЕТ там только фейки!
📍 Гарантии и Отзывы!
📍 Работаем честно!
≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡
Пробы Экстази, Лсд 25 Анси
Согласно 'Закону ФЗ' уведомляем вас, что для функционирования наш сайт собирает cookie, данные об IP-адресе и местоположении пользователей. Если вы не хотите, чтобы эти данные обрабатывались, пожалуйста, покиньте сайт. Конденсаторный петличный микрофон Shure MVL Всенаправленный конденсаторный петличный микрофон для смартфонов или планшетов, разъём TRS jack 3. Розничная цена:. Уточнить наличие. Курс USD: Курс Euro: Дистрибуция Каталог оборудования Каталог образовательных решений Бренды Поддержка. Комплексные решения Решения для бизнеса Решения для государственного и корпоративного сектора Решения для образовательного сектора Решения для частного заказчика Реализованные проекты Отзывы. Поддержка Сервисные центры Библиотека Запрос в службу поддержки.
Пробы Экстази, Лсд 25 Анси
Пробы Экстази, скорость Зюзино
Пробы Экстази, Лсд 25 Анси
Оценка гиппокампальной дендритной сложности у пожилых мышей с использованием метода Гольджи-Кокса
Купить Соль, бошки, шишки закладку Хашури
Пробы Экстази, Лсд 25 Анси
Купить Мефедрон, меф телеграм Верхняя Тура
Конденсаторный петличный микрофон Shure MVL-3.5MM
Здесь мы подробно представляем протокол Golgi-Cox. Этот надежный метод окрашивания тканей позволяет получить качественную оценку цитоархитектуры в гиппокампе и во всем мозге с минимальным устранением неполадок. Дендритные шипы - это выступы из нервных дендритных валов, которые содержат возбуждающие синапсы. Морфологические и ветвящиеся вариации нейронных дендритов внутри гиппокампа связаны с образованием и памятью. Существует несколько подходов к окрашиванию Гольджи, которые были полезны для определения морфологических характеристик дендритных беседок и получения четкого фона. Настоящий метод Гольджи-Кокса небольшой вариант протокола, который снабжен коммерческим набором для окраски Гольджи был разработан для оценки того, как относительно низкая доза химиотерапевтического препарата 5-flurouracil 5-Fu повлияет на дендритную морфологию , Число шипов и сложность арборизации в гиппокампе. В этом протоколе сообщается информация для каждого шага, чтобы другие исследователи могли надежно окрашивать ткань по всему мозгу с высоким качеством результатов и минимальным устранением неполадок. Дендриты являются самой большой частью нейронов, которые принимают и обрабатывают пресинаптический ввод 1. Их дендритные процессы имеют сложную геометрию, где проксимальные ветви имеют больший диаметр, чем дистальные ветви. По мере развития дендритов они образуют несколько связей с другими нейронами в процессе, называемом дендритной арбонизацией. Степень и структура этого ветвления определяют количество синаптических входов, которые дендрит может адекватно обработать 2. Дендритная арборизация - необходимый процесс пластичности, зависящей от активности, и правильного развития нейронных цепей. Расширение, ретракция, ветвление и синаптогенез представляют собой сложные процессы, которые включают внутренние генетические программы и влияния внешних факторов. Изменения в дендритной сложности связаны с патофизиологическими и поведенческими изменениями 5. Аномалии связаны с несколькими болезненными состояниями, включая синдром Fragile X и синдром Дауна 6. Дендритные шипы являются специализированными субклеточными отделениями дендритных беседок, которые получают возбуждающий вход в центральной нервной системе. Существуют три морфологических класса дендритных шипов с названием каждого класса по их размеру и форме: 1 грибные шипы, которые имеют сложные постсинаптические плотности с более глутаматными рецепторами, чем другие шипы 7 ; 2 колючие шипы, у которых нет стебля; И 3 тонкие шипы, которые состоят из затянувшегося узкого стебля и шаровидной головки 8. Дендритный объем позвоночника частично используется для их определения, при этом тонкие шипы обычно меньше 0,01 мкм 3 3 9 , Шипы стабилизируются созреванием. Например, тонкие шипы либо втягиваются через несколько дней, либо развиваются в грибные шипы. Альтернативно, грибные шипы относительно стабильны и могут выживать в течение длительного периода. Классический метод окрашивания Гольджи и его более современные вариации были полезны для изучения морфологии и плотности дендритных позвонков. Хотя точный механизм, в котором метод ГольджиOd, отдельные нейроны до сих пор неизвестны, принцип метода основан на кристаллизации хромата серебра Ag 2 CrO 4 16 , Все три метода начинаются с начальной фазы инкубации в солях хрома в течение от нескольких дней до нескольких месяцев, но между ними существуют определенные ключевые различия. Быстрое Гольджи использует четырехокись осмия на первом этапе, тогда как Гольджи-Копш включает параформальдегид. Метод Гольджи-Кокса использует хлорид ртути и дихромат калия вместо нитрата серебра и имеет время пропитки недель. Затем ткани секционируют и быстро помещают в разбавленный аммиакРаствор, затем фотографический фиксатор для удаления солей. Из трех типов метод Гольджи-Кокса считается лучшим при окрашивании дендритных беседок без значительных фоновых помех, отчасти потому, что кристаллические артефакты не встречаются на поверхности ткани в отличие от быстрого метода Гольджи 17 , 20 , Настоящий способ представляет собой небольшое изменение протокола, снабженного коммерческим набором для окрашивания Гольджи, и был разработан для оценки того, как относительно низкая доза 5-фу будет влиять на дендритные морфологические характеристики и плотность позвоночника. Любые полученные данные могут дать дальнейшее представление о том, как химиотерапевтическое лечение влияет на схему нейронов. Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian. Эксперименты проводились в соответствии с этическими стандартами, одобренными Комитетом по охране и использованию животных в УАМС. Влияние обработки 5-фу на дендритную арбонизацию и сложность гиппокампа окрашенных в Гольджи разделов мозга определяли количественно и отслеживали с использованием коммерчески доступного программного обеспечения для обработки изображений. После трассировки дендритная арборизация, плотность позвоночника и морфология позвоночника были проанализированы с использованием анализа Шолла и индекса дендритной сложности DCI. Анализ Sholl представляет собой количественный аналитический метод, который может быть использован для определения морфологии дендритных беседок Начиная с сомы, круги на расстоянии 10 мкм друг от друга перекрывают дендритные следы. Длина дендритов определяется числом окружностей, пересекающихся дендритами. Анализ точки ветвления, метод определения сложности древовидной беседки, основан на общем числе и порядке точек ветвления. Точка ветвления определяется как когдаВетвь разбивается на две ветви. Порядок ветвления является мерой сложности, основанной на том, сколько раз разветвляются ветви. Например, точкой ветвления первого порядка будет исходный дендрит, простирающийся от сомы, тогда как точка ветвления второго порядка будет точкой, в которой ветвь делит на две подверии. Изучая как точки ветвления, так и порядок ветвления, сложность дендритной беседки в зависимости от количества точек ветвления и в каких точках происходит ветвление меньший порядок ветвления ближе к соме, а более крупный порядок ветвления - Далее от сомы. Эти параметры были применены к DCI. CA1 и CA3 были разделены на апикальные и базальные части и анализировались независимо 26 , Все нейроны, выбранные дляКаждая экспериментальная группа выполняла следующие критерии: 1 дендриты имели темную и непротиворечивую окраску Гольджи по всей их длине; 2 дендриты были заметно в тактике; 3 у каждого нейрона было достаточно места между ними для предотвращения помех во время анализа На рисунке 1 показан нейрон, который соответствует указанным выше критериям. Для определения статистических различий между фиктивными и 5-фу-группами использовали парный двухсторонний t- критерий. Все статистические анализы проводились с использованием аналитического программного обеспечения см. Для определения дендритной сложности для сравнения обработанных 5-футом и контрольных групп, обработанных физиологическим раствором, использовали анализ последовательности ветвей. Рисунок 1 : нейроны, окрашенные Гольджи, которые представляют критерии для визуализации и дальнейшего анализа. Все три типа позвоночника можно легко увидеть после окрашивания Гольджи. Окрашивание согласовано по всей длине дендрита, а дендрит изолирован от других нейронов. Шкала шкалы, 5 мкм. Нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка. Рисунок 2 : Golgi окрашен n Эвроны продемонстрировали значительные различия в плотности позвоночника между обработанными 5-Фу и группами, обработанными физиологическим раствором, в апикальном СА1, но не базальным СА1. Существенное различие в длине позвоночника между обработанными 5-футом и физиологически обработанными группами как в апикальном, так и в базальном СА1. A В апикальных пирамидальных дендритах CA1 5-Fu значительно уменьшало плотность позвоночника. Б В базальных дендритах существенных изменений общей плотности шипов не произошло. C Анализ Sholl показал, что обработка 5-футом значительно уменьшала дендритную арбонизацию при мкм и мкм от сомы в апикальных пирамидальных дендритах CA1. D В базальных дендритах обработка 5-Фу уменьшала дендритную арбонизацию при мкм и мкм от сомы. Рисунок 3 : Гольджи окрашенные нейроны продемонстрировали значительные различия в плотности позвоночника между обработанными 5-футом и физиологически обработанными группами как в апикальном, так и в базальном СА3. Существенное различие в длине позвоночника между обработанными 5-футом и физиологически обработанными группами в апикальном СА3, но не базальным СА3. A В апикальных пирамидальных дендритах CA3 5-Fu значительно уменьшало плотность позвоночника. Б В базальных дендритах 5-Фу значительно уменьшило общую плотность шипов. C Существенного влияния 5-фу лечения в апикальной области СА 3 не было. D В базальных дендритах 5-фу treaУменьшала дендритную арбонизацию на мкм от сомы. Рисунок 4 : Гольджи окрашенные нейроны в DG показали уменьшенную длину на 4- м и 6- м порядках после 5-фу лечения по сравнению с обработанной физиологическим раствором группой. Длина на порядок ветвления в пирамидальных нейронах области гиппокампа CA1. По сравнению с более современными методами метод Гольджи-Кокса имеет ряд преимуществ, которые делают его предпочтительным методом для изучения морфологии позвоночника: 1 окрашивание может использоваться практически для любой ткани; 2 базовая установка светового микроскопа - это все, что необходимо для Приобретать изображения на основе Гольджи, 3 изображение Гольджи-Кокса быстрее, чем конфокальная визуализация, и 4 окрашенные участки Гольджи жизнеспособны в течение нескольких месяцев до нескольких лет, чем образцы, которые флуоресцентно маркируются. Даже с этими преимуществами метод Гольджи-Кокса все еще имеет определенные ограничения. Во-первых, весь процесс занимает много времени, требуя нескольких недель окрашивания, после чего анализируются изображения. Как видно из этого протокола, в растворе A и в течение дня в растворе B требуется 14 дней, прежде чем начнется секционирование. Кроме того, выполнение секционирования, после окрашивания и монтажа займет часа на мозг. Каждый слайд должен высохнуть в течение 1 дня перед очисткой и закрытием. После этого количество времениЭто займет изображение, и анализ разделов будет зависеть от человека. Во-вторых, могут быть проблемы согласованности данных аналитиков из-за различий в классификации шипов По этой причине рекомендуется, чтобы один человек выполнял часть изображения и анализа каждого эксперимента, что еще больше увеличивает время завершения проекта. Существует несколько критических шагов метода Гольджи-Кокса, которые требуют точного времени и внимания. При окрашивании секций раствором гидроксида аммония необходимо, чтобы секции оставались в растворе не менее 19 мин, но не более 21 мин. Если секции не находятся в растворе гидроксида аммония в течение достаточного времени, они не будут правильно окрашены, что означает, что нейроны будут выглядеть менее определенными при визуализации, что затрудняет их анализ. Если секции находятся в растворе гидроксида аммония в течение более 21 мин, они могут статьEr-stained, что затрудняет идентификацию отдельных нейронов. Поэтому при переключении решений исследователь должен быстро двигаться. Другим важным шагом является передача секций на слайды. Прежде чем перемещать секции с помощью большой кисти, лучше сначала добавить небольшое количество PBS-T на слайд. Это позволяет легко размещать секции на слайде и маневрировать без разрыва. Еще одним критическим шагом является этап сушки после того, как секции размещены на слайде. Если слайды не высушиваются в течение не менее 20 мин при комнатной температуре, то некоторые секции, скорее всего, отпадают во время этапов обезвоживания. Если слайды высохнут дольше 30 мин, они, скорее всего, станут хрупкими и разрываются во время этапов обезвоживания. При выполнении этой процедуры есть определенные шаги, которые могут быть неприятными. Например, если весь мозжечок срезан, прежде чем помещать мозг в спецификациюImen держатель и секционирование, мозг может расколоться перед тем, как DG будет полностью разделен, что сделает любые другие секции непригодными для использования. Поэтому важно только каудально резать примерно половину мозжечка. Другим шагом, который может отрицательно повлиять на секции, является скорость вибрации и амплитуда. Хотя рекомендуемые настройки для 7 и 6 соответственно, при разрезании некоторые разделы могут распадаться в PBS или выглядят неравномерно. Чтобы исправить это, аккуратно отрегулируйте либо скорость вибрации, либо амплитуду, по одному, пока секции не находятся в тактике и даже между установками Несмотря на то, что доступны коммерческие наборы для окрашивания Гольджи, они часто не имеют точных деталей для каждого отдельного шага. В этом протоколе мы подробно расскажем о всех шагах, которые были использованы, чтобы позволить другим лабораториям надежно окрашивать ткань с высоким качеством с минимальным устранением неполадок. Используемые материалы доступны большинству нейронаучных лабораторий. Аберрации в дендрите morpHology и изменения в количестве дендритных шипов связаны с множеством неврологических расстройств Более того, эти возмущения дендритной арборизации могут представлять собой значительный морфологический признак индуцированной химиотерапией травмы в головном мозге В будущем мы рассмотрим, как структурные изменения, вызванные 5-фу, могут относиться к поведенческим, клеточным и молекулярным изменениям. Groves, T. To learn more about our GDPR policies click here. If you want more info regarding data storage, please contact gdpr jove. You have already requested a trial and a JoVE representative will be in touch with you shortly. If you need immediate assistance, please email us at subscriptions jove. Please enjoy a free 2-hour trial. In order to begin, please login. You have unlocked a 2-hour free trial now. All JoVE videos and articles can be accessed for free. To get started, a verification email has been sent to email institution. Please follow the link in the email to activate your free trial account. If you do not see the message in your inbox, please check your 'Spam' folder. Your access has now expired. Provide feedback to your librarian. If you have any questions, please do not hesitate to reach out to our customer success team. Login processing JoVE Journal Neuroscience. Дайте внутрибрюшинные инъекции 5-фу один раз в неделю в течение трех недель. Дайте внутрибрюшинные инъекции примерно в одно и то же время в каждый день. Например, между ч. Усыплять животных и извлекать мозг через 30 дней после окончательной инъекции. Процедура эвтаназии и экстракция мозга Сдерживайте грызуна и хватайте основание хвоста. С другой стороны, поместите большой палец или первый палец на thЕ основание грызуна. Быстро надавите на шею грызуна и нажмите вперед, а другая рука держит хвост, тянет назад. Держите грызуна одной рукой, а крупные хирургические ножницы - с другой. Поместите шею грызуна между двумя лезвиями и быстро обезглавьте голову. Возьмите отрубленную головку мыши и используйте тонкие ножницы, чтобы обрезать мех над черепом, вплоть до глаз. Затем поместите кончики ножниц в каждое гнездо для глаз и слегка задвиньте ножницы. Используйте пружинные ножницы, чтобы разрезать череп слева и справа от мозжечка. Используйте щипцы, чтобы поднять часть черепа вокруг мозжечка прямо вверх и вниз. Используйте пружинные ножницы, чтобы разрезать вдоль линии майдагиттала черепа. Используйте щипцы, чтобы снять оставшуюся часть черепа с мозга. Используйте шпатель и зонд, чтобы выкопать мозг в желаемый контейнер. Использование нержавеющей сталиЛезвие тила, разрезают каждый мозг вдоль плоскости среднего сечения. Выполните следующий метод Гольджи-Кокса в правом полушарии. Golgi окрашивание и подготовка тканей Погрузите свежесобранные полумодины в 5 мл раствора на основе хлорида ртути раствор А из набора в 10 мл коническую трубку. Раствор хлорида ртути является светочувствительным; Закройте трубу фольгой. Храните образец в темноте при комнатной температуре. Решение A предоставляется в комплекте, который указан в таблице материалов. Раствор А также называемый раствором хлорида ртути содержит токсичные реагенты, такие как дихромат калия, хлорид ртути и хромат калия. Носите защитные перчатки и работайте в вытяжном шкафу. Через 1 день медленно декантируйте раствор во временном контейнере например, большой лодке для взвешивания и утилизируйте его в контейнере для отходов биологической опасности. Погрузите мозг все еще в исходные 10 мл конические пробирки с 5 млРаствор хлорида ртути и возвращают образец в темное место при комнатной температуре в течение еще 13 дней. Добавить 30 г буфера после пропитки до 90 мл дистиллированной или деионизированной воды dH 2 O. Буфер после пропитки предоставляется в комплекте, который указан в таблице материалов. Через 14 дней в общем в растворе хлорида ртути промойте ткань dH 2 O, затем перенесите их в 6-луночные планшеты с буфером после пропитки. Накройте пластины фольгой и храните их при комнатной температуре в темноте. Пипеткой после пропитки буфера после 1 дня погружения и возобновить со свежим буфером после пропитки; Хранить в течение 1 дня в темноте при комнатной температуре. Разделение Наклейте луночные планшеты на их крышки с номерами в порядке возрастания слева направо и вверх-вниз. При отделении всего мозга подготовьте две или три луночных планшета на один мозг. Обозначьте верхнюю часть каждой крышки из 12 ячеек с идентификационным номером разделенного мозга. Пипетируйте 2 мл 1x PBS в каждую лунку каждой тарелки. Настройте сцену и включите вибрацию; Убедитесь, что в контейнере достаточно 1x PBS для покрытия ткани. Вырежьте два куска пластиковой парафиновой пленки и сложите их дважды. Поместите их поверх отверстий для ручек держателя образца, чтобы предотвратить прохождение 1x PBS на счетчик. Положите ленту на тканевой блок держателя образца, а затем нанесите на нее цианоакрилатный клей см. Таблицу материалов. Удалите мозг из 6-луночного планшета и поместите его на пластиковую или стеклянную посуду. Использовать нержавеющую сталь Стальной обоюдоострый клинок, чтобы обрезать около половины мозжечка. Вытрите мозжечок каудально. Убедитесь, что остальная часть мозжечка остается ровной. Немедленно поместите плоскую поверхность оставшегося мозжечка на клей. Ростральный конец, который ранее содержал обонятельную луковицу, должен быть направлен вверх. Подождите, по крайней мере, несколько минут, чтобы убедиться, что клей полностью высохнет. В то время как клей, который держит мозг на месте, сушит, залить 1x PBS в ванну для образцов. После того, как клей высохнет, поместите держатель образца в ткань в ванну с образцом. Если образец ткани не полностью покрыт, залейте более 1x PBS в ванну для образцов. Прикрепите лезвие к держателю лезвия вибратома и медленно lЗалейте лезвие в ванну с образцом до полного погружения в 1x PBS. Продолжайте опускать лезвие, пока оно немного под верхушкой ткани. Таблицу материалов для модели вибратома. Запустите вибрацию и отрежьте секции мкм Используйте большую кисть для перемещения участков ткани из ванны для образцов в каждую указанную лунку луночных планшетов. Продолжайте резать ткань до тех пор, пока не будет достигнуто желаемое количество участков ткани. После окрашивания Для каждого из следующих этапов окрашивания и полосканий используйте 2 мл указанного раствора на лунку. Используйте моторный наполнитель для пипеток см. Таблицу материалов для переноса растворов в скважины. Используйте переносную пипетку см. Таблицу материалов для переноса растворов из колодцев и в надлежащие отходыконтейнеры. Таблицу материалов до мл 0,01 М PBS. Разбавьте раствор гидроксида аммония осторожно 3: 5 по объему с dH 2 O непосредственно перед использованием. Процедите участки в разбавленном растворе гидроксида аммония в течение мин. Защитите светочувствительный раствор гидроксида аммония с фольгой. Раствор гидроксида аммония может вызвать ожоги, если он контактирует с кожей. Это может вызвать раздражение дыхательных путей при вдыхании. Процедите участки в буфере после окрашивания добавьте 90 г реагента D в мл dH 2 O в течение мин. Буфер после окрашивания является светочувствительным; Защитить его фольгой Дайте им высохнуть в течение мин при комнатной температуре, а затем помещайте их в банку Coplin на ночь. Снимите слайды с перчатками из банки Coplin и поместите их в пластиковую стойку см. Поместите пластиковую стойку в окрашивающую тарелку см. Обезвоживают их тремя 5-минутными моющими средствами. Поместите слайды в стеклянную стойку и опустите стойку в стакан для окрашивания, содержащий ксилол с металлической ручкой см. Осторожно, ксилол вреден при вдыхании и вызывает раздражение, если он касается кожи. Он легко воспламеняется в жидком и парообразном состоянии. Затем возьмите ползунки и положите их на носитель. Нажимайте любые запертые пузырьки воздуха под ползунками к краю тупым предметом, таким как конец кисти. Поместите слайды в область, удаленную от солнечного света, и дайте им высохнуть в течение дней. Приступайте к приобретению изображений с помощью микроскопа и анализу с помощью соответствующего программного обеспечения. Приобретите стек изображений Откройте программу обработки изображений см. Поместите слайд на ступень микроскопа. В меню в верхней части программы нажмите «Приобретение», а затем нажмите «Живое изображение». Установите микроскоп на 10X. Определите нейрон предпочтительности, а затем верните курсор, который выглядит как красный X, в центр сомы. Щелкните левой кнопкой мыши, чтобы установить контрольную точку. Установите микроскоп на 40X. Нажмите «Переместить» в меню в верхней части программы, а затем нажмите «К контрольной точке». Начните создавать стек изображений вручную, прокручивая с тонкой целью над тканью, пока она не окажется в фокусе. Нажмите «Установить верх» в нижнем правом углу программы под заголовком «Приобретение изображения». Прокрутите немного под ткань до тех пор, пока она немного не в фокусе, а затем нажмите «Установить снизу» в разделе «Приобретение изображения». Затем нажмите «Получить стек изображений». После того, как стек изображения будет получен, введите нужное имя файла изображения в появившемся окне. Сохранить как «файл MBF Ascii». Отслеживание нейронов В инструментеR под меню, щелкните поле «Название контура». Выберите «Soma» в раскрывающемся меню. Вручную проследите за сомой. Затем щелкните правой кнопкой мыши и выберите «Finish Cell Body», когда трассировка завершена. В разделе «Тип конфигурации» выберите «Создать». Задайте параметры и нажмите «Следующий шаг», чтобы открыть подзаголовок «Soma Detection». Чтобы установить параметры, выберите «Brightfield». Затем в разделе «Max Process Diameter» нажмите «Начать измерение». Используя курсор, перейдите к основанию дендрита и вручную установите диаметр. Нажмите «Да» в окне, которое попросит пользователя проследить все изображение. Unclick и затем нажмите «Следующий шаг», чтобы открыть подзаголовок «Размещение семян». Нажмите «Подтвердить семя»S ', а затем нажмите« Следующий шаг », чтобы подвести подзаголовок« Реконструкция нейрона ». В разделе «Нейрон» нажмите «Интерактивный». Выполните интерактивную трассировку, следуя направлению от программы дендритов и щелкнув правой кнопкой мыши, чтобы завершить выделенную область, прослеженную программой. После отслеживания всех дендритов нажмите «Следующий шаг». После появления нового окна сохраните новую конфигурацию с нужным названием. Нажмите «Сохранить». Анализ Откройте программу анализа см. Нажмите «Файл» в верхнем меню, а затем нажмите «Открыть файл данных». Выберите интересующий файл. В подзаголовке анализа выберите «Sholl Analysis». В окне «Sholl Analysis» установите радиус запуска до 10 мкм. В разделе «Анализ» щелкните по ячейкам «Дендриты» и «Филиалы». Правый clIck только что открытые окна и нажмите «Экспорт Excel». В рамках анализа нажмите «Анализ разветвленной структуры». Выберите «Все возможные анализы». Щелкните правой кнопкой мыши только что открытое окно и нажмите «Экспорт Excel» Play Video. Cite this Article Groves, T. Before you can use the favorites feature you must sign in or create an account. Continue with Shibboleth or Forgot Password? Please enter your email address so we may send you a link to reset your password. You might already have access to this content! Please enter your Institution or Company email below to check. Please enter an institutional email address. Check access. Create Account. Forgot Password? Reset Password. Phone number. Request trial. Thank You! A JoVE representative will be in touch with you shortly. Waiting for verification email? Please click here to activate your free 2-hour trial. If you do not wish to begin your trial now, you can log back into JoVE at any time to begin. Enable Javascript for audio controls. Get cutting-edge science videos from J o VE sent straight to your inbox every month. We use cookies to enhance your experience on our website. Continue Learn more Close.
Ливорно цена на Кокаин, мефедрон
Оценка гиппокампальной дендритной сложности у пожилых мышей с использованием метода Гольджи-Кокса
Пробы Экстази, Лсд 25 Анси
Давос купить наркотик Меф, соль, ск, амф в телеграм
Конденсаторный петличный микрофон Shure MVL-3.5MM
Пробы Экстази, Лсд 25 Анси
Венёв бесплатные пробы Меф, соль, ск, амф
Оценка гиппокампальной дендритной сложности у пожилых мышей с использованием метода Гольджи-Кокса
Пробы Гашиш, Бошки, Шишки Ясногорск
Пробы Экстази, Лсд 25 Анси