Порт-Элизабет бесплатные пробы Экстази, скорость

≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈

Гарантии! Качество! Отзывы!

Проверенный магазин!

≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈ ≈

▼▼ ▼▼ ▼▼ ▼▼ ▼▼ ▼▼ ▼▼ ▼▼ ▼▼

Наши контакты (Telegram):☎✍

>>>✅(НАПИСАТЬ ОПЕРАТОРУ В ТЕЛЕГРАМ)✅<<<

▲▲ ▲▲ ▲▲ ▲▲ ▲▲ ▲▲ ▲▲ ▲▲ ▲▲

≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡

⛔ ВНИМАНИЕ!

📍 ✅✅✅ Используйте ВПН, если ссылка не открваеться !!!

📍 В Телеграм переходить только по ССЫЛКЕ что ВЫШЕ! В поиске НАС НЕТ там только фейки!

📍 Гарантии и Отзывы!

📍 Работаем честно!

Порт-Элизабет бесплатные пробы Экстази, скорость

≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡ ≡

Этот метод был разработан с целью предоставления стабильного лекарственного раствора через сонную артерию, чтобы оценить фармакокинетики новых лекарственных препаратов на мышах. Предлагая использование препарата, лекарственной комбинации, или доставки лекарств в новой системе, надо оценить фармакокинетики препарата в модели обучения. Как использование мышиных моделях зачастую жизненно важным шагом в доклинической открытия и разработки лекарственных препарата , надо разработать систему, чтобы представить наркотики мышам в мундире, воспроизводимым способом. В идеале, система должна позволить сбор образцов крови через регулярные промежутки времени в течение установленного времени, конечно. Возможность измерения концентрации препарата от масс-спектрометрии, позволило следователям следить за изменениями в уровнях в плазме наркотиков в течение долгого времени в отдельных мышей 1, 9, В этом исследовании паклитаксел вводили в трансгенных мышей в виде непрерывной артериальной инфузии в течение трех часов, в то время как образцы крови были одновременно приняты ретроорбитального кровотечений в точках заданного времени. Настои сонной артерии являются потенциальной альтернативой для яремную вену вливаний, когда такие факторы, какопухоли молочных желез или других препятствий сделать яремной настои непрактично. Используя эту технику, концентрации паклитаксела в плазме и ткани достигается такой же уровень, по сравнению с яремной инфузии. В этом уроке мы покажем, как успешно катетер сонной артерии путем подготовки оптимизированную катетер для конкретной модели мыши, а затем показать, как вставить и закрепить катетер в мышь сонной артерии, пропустите конец катетера через спину из шеи мыши, и подключить мышь к насосу, чтобы доставить регулируемой скоростью притока наркотиков. Несколько низкий объем ретро-орбитальной кровотечения позволяют анализировать концентрации в плазме наркотиков в течение долгого времени. Введения препарата через сонную артерию может быть выполнена надежно и воспроизводимо, оптимизируя оборудование и технику. Процедура не сложная, хотя и требует точного управления и внимание к деталям. Улучшенный уход и умения необходимы для изоляции сонную артерию и вставить катетер, который обычно могут быть приобретены через практику. Хирургическое опытным специалистом не должно превышать одного часа. После успешной операции, мышь должно быть нормальным и здоровым хотя мышь может реагировать с фактическим инфузии лекарственного средства , и препарат ы можно вводить в контролируемой, равномерного непрерывного дозирования. Образцы крови должны быть взяты из сайта, кроме сонной артерии; ретроорбитального кровотечения оказалось легко собрать и удовлетворительным для анализа концентрации препарата. Катетеры оптимального размера и формы являются бесценным активом в выполнении успешного вливания Она оказалась предпочтительнее моды катетеров из полиэтиленовой трубы, используемой для подключения мыши к инфузионной шприца. Таким образом, все трубки, разъемы и иглы были последовательных измерениях, которые упрощенных настой сборку. При использовании этого метода, что нет необходимости, чтобы подтолкнуть кончик катетера в артерию мимо точки, где она еще видны, и приток крови к сонной артерии не не восстановлен до окончания катетер сначала закреплены. Это снижает опасность прокола артерии или наличия катетер выталкиваются высокого давления кровотока. Конструкция катетера здесь не включают «поднять», чтобы держать это в месте, так обеспечении катетер хорошо со швами и хирургическое лента является одной из приоритетных. Инфузионные растворы могут быть предпочтительнее простых инъекций внутривенно болюсно, как лучше имитируют из клинического примененияпрепараты, такие как таксаны 3, 12, Этот метод часто может быть уместно даже в опухолевых свободной мышей: хотя выделения и catheterizing сонной немного более агрессивным, мы обнаружили, что предпочтительнее яремной, потому что склонность яремной стене сорвать привело к более неудачных вставок и неудач, чтобы закончить Время, конечно 3 ч. В образцы крови и тканей, собранные показал ожидаемые уровни paclitaxEL, в диапазоне от уровней, наблюдаемое после яремной инфузий 1. Этот метод можно ожидать, что одинаково хорошо работать и в других мышиных моделях и с другими инфузионных растворов. Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian. Этот протокол был одобрен Комитетом по Fox Chase онкологический центр институционального уходу и использованию животных в общем и в лабораторных животных фондом, и установлено, что в соответствии с ведомственным руководящим принципам для гуманного обращения с животными. Распределение Паклитаксел следует предсказуемые схемы в течение 3 ч Режим дозирования от 15 минут высокой скорости инфузии, за которыми следует мин на низкой скорости инфузии. На рисунке 1 показано сравнение яремной вены-инфузионных концентрации в плазме паклитаксел и сонных артерий вливаний. Концентрации паклитаксел быстро падать в первые 15 мин после первоначального большого объема инфузии, а затем выравнивают в течение следующего мин. Для сравнения, уровень паклитаксела в бедной инфузии начать относительно низким, и парить вверх и вниз по всей анализа. Это был, скорее всего, в результате закупоривания сосудов в соответствии начале в настое. Отчеты анализа показывают, мыши были практически нет внешнего реакции на вливание, подтверждающие идею низшей введения препарата. Рисунок 2 показывает относительные уровни паклитаксел в печени и ткани головного мозга, а также плазме крови, в конце 3 ч настой. На рисунке Паклитаксел концентрации от ткани Сразу после 3 ч вливания паклитаксела и сбора последнего образца крови, мышь эвтаназии, и печень и мозг ткани образцы были собраны. Уровни концентрации паклитаксела в плазме и ткани были приобретены анализа масс-спецификации. Эти данные представляют образцы, собранные из сонной Infusion-Мауса на рисунке 1. Рисунок 3: Хирургическое атрибутика. А Катетер Производство: Тяговая те собственные катетеры продолжает вниз материальные затраты, в то время как позволяет повторноискатель адаптировать размер и форму катетера в возрасте мыши и размера B Подготовить до хирургии:. Рисунок 4: Получение сонной артерии и катетера. A Вырезать через кожу, двигаться в сторону желез и использовать пинцет, чтобы грубо отдельный жира подвергать мышцы. B Используйте пинцет, чтобы аккуратно отдельная мышца выставить правую сторону трахеи. Сонной артерии становятся видимыми как крупнейший, толстостенных сосудов, идущей параллельно трахеи. C Перерыв фасции вокруг артерии. D Отдельные блуждающий нерв из сонной артерии. E Продолжайте удаление фасции до Carotid полностью изолирован вдоль полости. F шовный постоянный узел в передней конечности, и скольжение узел на задней конечности. G Третий шов резьбой под сонной артерии и очень свободно завязывают. H артерия порезал чуть выше переднего шва. Я Вставьте катетер в самый последний в артерии. Захватите переднюю шов пинцетом вытащить артерии вниз по катетеру. J Secure катетер в сонную артерию со всеми тремя швами. Рисунок Размещение Шовный Схематическое изображение хирургического участка до и после установки катетера соответствует фотографию рис 4G, с добавлением ника в артерии, как показано на рисунке 4 часов. Схема настой установка Шприц заполняется препарата, и ограничен с тупой иглой. Полиэтилен линия придает шприца сонной катетера. Насос медленно сжимает шприц, чтобы доставить равномерное дозирование непосредственно в кровоток. Вливание сонной артерии является важным методом в данном исследовании паклитаксела фармакокинетики. Настой сонной артерии является метод быстро распространять наркотик по всей кровеносной системе После того как образцы собраны, они должны быть проанализированы с помощью соответствующих методов. Мы использовали масс-спектрометрии для определения концентрации паклитаксела в образцах плазмы и тканей. Чтобы дополнительно подтвердить эту технику, мы направили образцы крови и тканей к независимому лабораторию для анализа. Эти данные были нанесены в виде отдельных кривых концентрация в плазме-паклитаксел для каждого испытания на животных фиг. Двумя основными факторами, необходимые для успешного сонной катетеризации хорошо вылеплены катетеры и изоляция превосходит артерии. Вылепление катетеры в зависимости от размера модели мыши имеет первостепенное значение. Если диаметр катетера слишком толстая, вставка в артерию будет чрезмерно сложно, в то время как слишком тонкий катетер будет сложнее обеспечить и вероятность засорения до или во время инфузии. Угол и острота кончика катетера должен также быть в умеренном диапазоне; совет, который является слишком резким, может проколоть стенку артерии, в то время как совет, который является слишком скучно будет сложно вставить в артерию. Измерения должны быть расширенывверх или вниз эмпирически с учетом индивидуальных моделей. Выделение сонной артерии должен быть тонким, преднамеренное процесс, чтобы избежать ненужного повреждения ткани и предотвратить крупномасштабную кровотечение. Подкожное-жира в общем случае могут быть легко разделены с низкого до среднего острых щипцов. Мышечная ткань над сонной артерии должны быть разделены среды для тонкой наконечником щипцов вдоль уклона мышечных волокон. Если более обширный разрыв необходимо, техник должен быть крайне осторожными, чтобы избежать разрыва мелких кровеносных сосудов. После того, как сонная видно, все еще будет изрядное количество фасции, которая должна быть tweezed от артерии с мелкими наконечником пинцетом. Наконец, блуждающий нерв должен быть отделен от сонной артерии без повреждения либо. Когда сонной правильно выделен, он должен быть возможно вставить под щипцы, с пустым пространством по обе стороны от артерии рис 4Е. Когда Трудаемых стрельба бедные настои, начнем с рассмотрения инструкциям на насосе, чтобы быть уверенным, что следователь неправильно запрограммирован насос для достижения ожидаемых дозировку. Затем тщательно рассмотреть вопрос об изменении объема, что будет вводить в подопытного животного. Разбавление препарата должна быть рассчитана таким образом, что объем лекарственной уместно: объем не должен быть слишком большим, чтобы животное могло терпеть, и в идеале не будет существенно влиять кровяное давление; еще объем должен быть достаточно большим для насоса, чтобы доставить надежно, и создаст устойчивый поток, чтобы избежать засорения на перекрестках. Если сабо стали обычным явлением, рассмотреть вопрос о переходе к меньшего калибра большего диаметра иглы и трубки. UsefulnESS этого метода может быть ограничено такими факторами, как размер и общее состояние здоровья субъекта, и предполагаемого периода времени инфузии. Операция и настой может перенапрягать уже проблемных тему. Даже в здоровом животном, катетер сонной артерии подходит только для краткосрочных вливаний, в общем случае нескольких часов до нескольких дней. Рассмотрим, какие методы обезболивания будет использоваться, если мыши обнаруживают признаки дискомфорта в ответ на введения препарата, такие как повторного применения местной анестезии в область раны, или упреждающих системных анальгетиков. Это будет необходимо иметь все животное работу утвержденный местной нормативной организации животного или IACUC, чтобы получить соответствующие разрешения для выполнения этой процедуры. Если это необходимо, чтобы иметь более длительный вливание, или иметь мыши выживают настой в течение длительного периода времени, альтернативные методы инфузионные должны быть изучены. Мы хотели бы выразить признательность РКИК лабораторных животных фонду за поддержку в этом проекте. Мы благодарим Wolfe Laboratories, Inc. Jacobs, J. To learn more about our GDPR policies click here. If you want more info regarding data storage, please contact gdpr jove. You have already requested a trial and a JoVE representative will be in touch with you shortly. If you need immediate assistance, please email us at subscriptions jove. Please enjoy a free 2-hour trial. In order to begin, please login. You have unlocked a 2-hour free trial now. All JoVE videos and articles can be accessed for free. To get started, a verification email has been sent to email institution. Please follow the link in the email to activate your free trial account. If you do not see the message in your inbox, please check your 'Spam' folder. Your access has now expired. Provide feedback to your librarian. If you have any questions, please do not hesitate to reach out to our customer success team. Login processing JoVE Journal Medicine. Предварительная подготовка Подготовка катетера: Подготовка катетер с короткой длины полиэтиленовой трубки, модифицированного с образованием разбавленной, тупого конца фиг. Сделайте несколько катетеров заранее и сэкономить на неопределенный срок. Зажгите горелку и отрегулируйте установить низкую устойчивое пламя. Держите трубки близко к пламени, чтобы смягчить полиэтилен. Когда трубка начинает плавиться, медленно растащить два конца, чтобы создать утонченную часть трубки, примерно 0,25 мм OD. Вырежьте скошенный конец примерно 0,75 см вдоль тонкой части. Это гарантирует достаточно трубки должны быть закреплены в артерии, не создавая слишком длинную катетер. Чрезмерно длинный конец может также проводить достаточное количество жидкости, чтобы существенно изменить жидкого объема тома катетера. Тупой скошенный конец, быстро проходя через пламя - при правильном подогревом, конец становится немного округлены и дополненное. Кончик крючки немного назад, что помогает закрепить трубку, вставляя в артерию. Вырезать трубки 6,0 см от точки, где она начинает тонкий. Это делает очень управляемый катетер, который достаточно долго, чтобы нить до выхода из шеи и держать и работать с комфортом, но достаточно коротким, чтобы предотвратить мышь от грызть избыточного трубки или требуя слишком много дополнительного объема инфузии, чтобы очистить первоначальный физиологический раствор , Подготовьте шприц примерно 0,2 мл раствора гепарина, увенчанный притупленной иглы. Вставьте иглу в широком конце катетера Рис 3В. Заполните катетер гепарином, будьте осторожны, чтобы гарантировать, что нет никаких пузырьков вНКТ. Установите гепарин шприца и катетера в сторону на стерильной зоне. Стерилизация катетеров гамма-облучением, путем размещения катетера ы в чашке Петри, и подвергая до 20 Гр из гамма-облучением. Если у вас нет доступа к источнику гамма-излучения, проконсультируйтесь с вашим животным объекта для исследования других средств стерилизации, например, газо- или химической стерилизации. Не автоклав, как полиэтилен не может быть тепловой стерилизации. Создание солевым свинца рис 3b. Приготовьте второй шприц примерно 0,5 мл стерильного физиологического раствора, соблюдая осторожность, чтобы обеспечить без пузырьков линию. Отрежьте второй кусок трубы, примерно 15 см, и скользить на притупленной иглы шприца. Приложить порт разъема к свободному концу трубки. Проверьте, что поток солевого раствора беспрепятственно плавно продвижении небольшой объем физиологического раствора через свинец. Используйте этот физиологический лидерство после катетера, чтобы проверить поток черезкатетер, и, чтобы избавиться линию крови. Установите физиологический шприц в сторону на стерильной зоне. До операции, стерилизации оборудования в автоклаве, или, альтернативно, по стерилизации газа или стеклянных шариков стерилизации. Подготовьте стерильную хирургическую область. Обложка скамейки и микроскоп базу с чистого располагаемого, впитывающей прокладки. Подготовка хирургического доска, покрывая двумя слоями чистой, впитывающей бумаги, надежно прикрепленными клейкой лентой. Выложите все хирургические материалы как каталогизированы в список материалов , чтобы они были легко доступны. Вырезать три длины стерильной шва, 8 см каждый, и отложите в сторону с другими поставок. Поставьте порт, где она будет легко доступна Рис 3B. Администрирование ветеринарный вазелин глазной мази на глазах, чтобы предотвратить сухость в то время как под наркозом. Убедитесь, что животное не разбудить во время хирургических препаратов, позволяя мыши достаточно времени в ингаляционной камере до подготовительной по крайней мере, две минуты , или путем введения изофлурана к мыши с помощью носового конуса во время преп. Вернуться мышь для анестезии камеры. Когда мышь достаточно инертен, перейти на стерильный хирургический участок, разместить анестезии носовой конус над носом и ртом мыши, и отвлечь поток изофлураном к носовой обтекатель. Подтвердите правильное обезболивание, зажимая лапу щипцами; когда мышь не показывает никакой реакции, переходите к следующему шагу. Поместите мышь на спине, с головой, обращенной кСледователь. Закрепите ушах, передних лап и задних-лапы к хирургическому доске с помощью клейкой ленты или другого запретительного устройство держать мышь устойчивым. Выделение сонной артерии Сделать 1 см продольный разрез немного правее от средней линии шеи. Используйте пинцет, чтобы отделить жир и мышцы, чтобы выставить трахеи рис 4А. Найдите сонной артерии, идущие параллельно трахеи рис 4В. Осторожно используйте щипцы для отдельной фасции перекрывающих артерию рис 4C. Слегка потянуть блуждающий нерв в стороне от сонной артерии, и вставить щипцов в пространство между. Аккуратно откройте щипцы для создания разрыва в фасции, и осторожно вытяните в сторону нерв от артерии, от развилки в артерии вблизи гортани переднего конца , до задняя , насколько это возможно по крайней мере, 3 мм Рисунок 4D. Очистите от любой реостающие фасции, пока артерии не хорошо изолирован рис 4Е. Добавить каплю физиологического раствора к области хирургии иногда, чтобы держать ткань влажной, и, таким образом, менее хрупкими и менее склонна к разрыву случайным образом. Размещение шовный и подготовка артерии для катетеризации рисунки 4, 5. Используйте пинцет, чтобы нарисовать шелковой нитью нить под артерии. Свяжите безопасный узел, чтобы закрыть артерию как далеко в сторону передней, насколько возможно рис 4F. Нарисуйте второй нить под артерии. Свяжите выдвижной узел временно перекрыть артерию, как далеко в сторону задней насколько возможно рис 4F. Проведите третью нить под артерии. Свяжите очень свободную узел между первыми двумя швами, которые будут использоваться, чтобы быстро обеспечить катетер после размещения рис 4G. С шва, захватите нижнюю узел тянуть артерии слегка натянута. Ник выше артерии, но очень близко к, переднего шва рис 4H. Будьте осторожны, чтобы не зайти слишком далеко, но проверить щель, чтобы убедиться, что открытие беспрепятственно. Удалить гепарин заполненные катетер с иглой шприца, пытаясь избежать создания больших карманы воздуха с обоих концов. Манипулирование катетер позиционировать скос под удобным углом, как правило, вниз, и слегка вправо для правшей. В то время как, держась за швом держать артерию оставаясь немного тугой, аккуратно вставьте катетер в щели рис 4I. Используйте пинцет, чтобы удерживать передний шов и вытащить артерии вниз над катетер толкая вверх чрезмерно с катетером может привести к скошенный конец, чтобы проколоть артерии. Осторожно отпустите катетера и передний шов. Обеспечение катетера и инициирование кровотока Цифры 4J, 5B. Закрепите катетер, затянув узел среднего шва, недалеко от входа катетера в артерию. Сделайте плотный тройной узел, но будьте уверены, не тянуть так туго, как препятствовать поток через катетер. Далее закрепите катетер, привязав его с переднего шва, ниже входа в артерии. Закрепить солевой привести к катетеру с помощью штекера соединител, снова пытаясь избежать введения пузырьков воздуха в линии. Возьмитесь за концы задней швом и осторожно потяните, чтобы освободить себя узами брака. Маневр шов вниз артерии, на конец катетера не удалите нить. Кровь должна течь в катетер; если нет потока крови, осторожно покачивание катетер, чтобы попытаться удалить сужение. Когда поток появляется свободный, использовать последнюю нить из задней шва , чтобы связать дополнительный узел, чуть выше среднего шва. Теmporary герметизация катетера. Промыть катетер крови, а затем использовать кровоостанавливающего чтобы зажать конец катетера вблизи штекера соединител. Снимите разъем и заменить его на порт вилкой, чтобы закрыть конец катетера, и снимите кровоостанавливающего. Перемещение катетер, чтобы выйти из задней части шеи. С пинцетом в каждой руке, используйте одну пару щипцов, чтобы держаться за катетера чуть ниже передней шва, и с другой, нажмите излом в катетера, так что будет легко согнуть в сторону. Повторите для создания второго излом. Это позволяет свободный конец катетера, чтобы вытянуть в направлении задней части головы мыши, не вынуждая кончик катетера, чтобы включить в боковом направлении к стенке артерии. Сделайте небольшой надрез примерно 4 мм ниже и позади правого уха. Используйте пинцет, чтобы удерживать открытую лоскут кожи, во время работы тупой полый зонд под кожу, чтобы создать канал через щеку, в полость на шее. Желательно, чтобы принести зонд вокруг слюнной железы, вместо того, чтобы идти между железой и кожи. Используйте пинцет, чтобы аккуратно освободить пространство для зонд для выхода. Не тяните слишком сильно; убедитесь, что катетер не дробления или сжимая кровеносные сосуды или органы. Закрытие и восстановление. Администрирование местное болеутоляющее например бупивакаин в плечевой разрез, и покрыть рану водостойкость, хирургического скотчем. Нанесите второй кусок скотча, чтобы в дальнейшем обеспечить катетер. Администрирование местное болеутоляющее к груди разрез, и тесное рану шелковой или скрепками. Удалить мышь от анестезии, и позволить животным, чтобы восстановить в чистом, нагревали пространство место клетку сверху грелкуили под инфракрасной лампой , по крайней мере, 30 мин. Измерить 50 мг паклитаксела в 15 мл центрифужную пробирку. Добавьте 10 мл стерильной метанола. Кап трубки. Поворот вручную или на вращающемся шейкере при комнатной температуре, пока порошок не растворится. Подготовьте инфузионный насос рисунок 6. Вырезать длинную длину полиэтиленовой трубкой приблизительно 40 см. Приложите притупляются иглу в одном конце, и разъем порта в другой. Составление препарата в шприц с известным внутренним диаметром- большинство программируемых насосы потребует диаметр цилиндра шприца, чтобы вычислить скорость гое насос рука. Установите иглу в шприце и загрузки лекарственного средства через иглу и трубки. Расположите шприц в насос в соответствии с указаниями производителя. Премьер-насос так, что препарат течет плавно из разъема вилки, и она готова для инфузий. Прикрепите мышь, чтобы накачать. Держите мышь устойчивый и использовать кровоостанавливающего зажать катетер, недалеко от порта вилкой. Снимите пробку и заменить разъем прилагается к шприцу и трубки. Примечание: Кровь может начать течь обратно через трубы. Быстро вводить быстрый насос, чтобы очистить объем катетера рассчитаны эмпирически, путем наблюдения за объем 6 см трубки, а затем сразу же перейти к нужной скорости инфузии. Продолжить вливания паклитаксела для трех часового курса. Монитор трубки иногда, чтобы проверить на герметичность в местах соединений, как это часто является признаком закупорки в потоке на мышь. Смотреть мышь для ожидаемых или неожиданных реакций на вливания вялость или гиперактивность, признаки дискомфорта. В зависимости от длины и характера инфузии, мышь не может ни есть, ни пить, но быть уверенным, чтобы обеспечить доступ к пище и воде в соответствии с установленной политикой учреждения. Будьте в курсе потенциал для обезвоживания мыши путем сбора большого количества крови. Продолжайте держать в клетке тепло с грелку или лампы, если мышь не появится на желание держаться подальше от жары. Если животное не усыпляют в нескольких часов после операции, осуществлять план после хирургического лечения животного, в том числе стерильные жилищных условий и лечения послеоперационной боли. Внимательно следить мыши, особенно в первые несколько минут, чтобы убедиться, что он не вытащить трубку через гиперактивности или раздражение от трубки который может быть признаком плохой вставки. Если мышь не находится над-активных, постоянная MonitoКольцо может и не понадобиться, но проверить мышь обычно, чтобы убедиться, что животное не запутаться в трубке. Ремень и система троса имеются в продаже, но их использование выходит за рамки этого протокола. Сбор образцов. Соберите образцы крови через регулярные промежутки времени по подчелюстной или ретро-орбитальной кровотечений Если ваш протокол не использует молочных моделях опухолей, считают сбора крови через яремную катетер, введенный в то же время, что и сонной катетера. Будьте осторожны, чтобы не тянуть на инфузионной линии. Если сбор по ретро-орбитальной кровотечений, слегка обезболить мышь с ингаляционного анестетика например Метоксифлуран так что нужно не захватить за шкирку, чтобы закрепить мышь. Спин кровь в hemocrit центрифуге, чтобы отделить клетки крови от плазмы. Используйте файл или алмаз-наконечник пера забить трубу на лице разделения фаз. Перерыв трубку и собирать плазму только, в маленькой, морозильной безопасный трубки. Усыпить мышь по CO 2 удушья. Сбор ткани около 20 - 50 мг из органов, представляющих интерес и флэш замораживание в жидком азоте. Удалить МТБЭ и сухих образцов. Подготовка калибровочных стандартов. Экстракт стандарты в двух экземплярах, используя тот же способ, что и для образцов исследуемых выше. Рассчитать концентрацию с использованием коэффициента площади паклитаксела к внутреннему стандарту. Используйте калибровочные стандарты для создания калибровочной кривой, и интерполяции данных образцов исследование посадки на кривой. Нормализовать концентрации образцов исследование, проведенное начальным весом образца до гомогенизации. Уровни паклитаксела в плазме в течение сонных и яремной вливаний Кривые представляют плазменные концентрации паклитаксела в отдельных мышей. Период полураспада паклитаксела рассчитывали по кривым, генерируемых на сонной инфузии был 10 мин и в течение яремной инфузии был 11 мин. Сонной настой показывает примерно эквивалентные уровни концентрации препарата по сравнению с яремной инфузии. Непрерывные низкие концентрации или концентрации, что цикл вверх и вниз, часто Represent плохой настой. Play Video. Cite this Article Jacobs, J. Before you can use the favorites feature you must sign in or create an account. Continue with Shibboleth or Forgot Password? Please enter your email address so we may send you a link to reset your password. You might already have access to this content! Please enter your Institution or Company email below to check. Please enter an institutional email address. Check access. Create Account. Forgot Password? Reset Password. Phone number. Request trial. Thank You! A JoVE representative will be in touch with you shortly. Waiting for verification email? Please click here to activate your free 2-hour trial. If you do not wish to begin your trial now, you can log back into JoVE at any time to begin. Enable Javascript for audio controls. Get cutting-edge science videos from J o VE sent straight to your inbox every month. We use cookies to enhance your experience on our website. Continue Learn more Close.

Порт-Элизабет бесплатные пробы Экстази, скорость

Экстази, скорость дешево купить Нагатино-Садовники

Порт-Элизабет бесплатные пробы Экстази, скорость