Наркотики бесплатные пробы Льеж
Наркотики бесплатные пробы ЛьежНаркотики бесплатные пробы Льеж
• • • • • • • • • • • • • • • • •
Наркотики бесплатные пробы Льеж
• • • • • • • • • • • • • • • • •
Гарантии ❗ Качество ❗ Отзывы покупателей ❗
• • • • • • • • • • • • • • • • •
👇 👇 👇 👇 👇 👇 👇 👇 👇 👇 👇 👇
Наши контакты:
▶️▶️▶️ (НАПИСАТЬ ОПЕРАТОРУ В ТЕЛЕГРАМ)️ ◀️◀️◀️
👆 👆 👆 👆 👆 👆 👆 👆 👆 👆 👆 👆
• • • • • • • • • • • • • • • • •
🚩 ИСПОЛЬЗУЙТЕ ВПН (VPN), ЕСЛИ ССЫЛКА НЕ ОТКРЫВАЕТСЯ!
🚩 В Телеграм переходить только по ссылке что выше! В поиске тг фейки!
• • • • • • • • • • • • • • • • •
Наркотики бесплатные пробы Льеж
Глубокая эвтектическая предварительная обработка на основе растворителей с помощью микроволновой печи — это зеленый, быстрый и эффективный процесс фракционирования лигноцеллюлозы и восстановления лигнина высокой чистоты. Предварительная обработка по-прежнему является самым дорогим этапом в лигноцеллюлозных процессах биоперерабатывающего производства. Он должен быть экономически эффективным за счет минимизации химических требований, а также потребления энергии и тепла и использования экологически чистых растворителей. Глубокие эвтектические растворители DES являются ключевыми, зелеными и недорогими растворителями на устойчивых биообиплавательных предприятиях. Они представляют собой прозрачные смеси, характеризующиеся низкими температурами замерзания, возникающими в результате по меньшей мере одного донора водородной связи и одного акцептора водородных связей. Хотя DES являются перспективными растворителями, для конкурентоспособной рентабельности их необходимо сочетать с экономичной технологией отопления, такой как микроволновое облучение. Микроволновое облучение является многообещающей стратегией для сокращения времени нагрева и повышения фракционирования, поскольку оно может быстро достичь соответствующей температуры. Целью этого исследования была разработка одноэтапного, быстрого метода фракционирования биомассы и экстракции лигнина с использованием недорогого и биоразлагаемого растворителя. В этом исследовании проводилась предварительная обработка DES с помощью микроволновой печи в течение 60 с при Вт с использованием трех видов DES. Смеси DES были легко приготовлены из холина хлорида ChCl и трех доноров водородных связей HBD : монокарбоновой кислоты молочной кислоты , дикарбоновой кислоты щавелевой кислоты и мочевины. Эта предварительная обработка использовалась для фракционирования биомассы и извлечения лигнина из морских остатков листья Posidonia и aegagropile , агропищевых побочных продуктов миндальные раковины и оливковое жмых , лесных остатков сосновые шишки и многолетних лигноцеллюлозных трав Stipa tenacissima. Дальнейшие анализы были проведены для определения выхода, чистоты и молекулярно-массового распределения восстановленного лигнина. Кроме того, влияние ДСС на химические функциональные группы в экстрагированном лигнине определяли методом инфракрасной спектроскопии с преобразованием Фурье FTIR. Результаты показывают, что смесь ChCl-щавелевой кислоты обеспечивает самую высокую чистоту лигнина и самый низкий выход. Настоящее исследование показывает, что процесс DES-микроволновой печи является сверхбыстрой, эффективной и конкурентоспособной по стоимости технологией фракционирования лигноцеллюлозной биомассы. Устойчивые процессы биопереработки интегрируют переработку биомассы, ее фракционирование в молекулы, представляющие интерес, и их преобразование в продукты с добавленной стоимостью 1. При биорефинировки второго поколения предварительная обработка считается необходимой для фракционирования биомассы на ее основные компоненты 2. Широко применяются традиционные методы предварительной обработки с использованием химических, физических или биологических стратегий 3. Однако такая предварительная обработка считается самым дорогим этапом биопереработки и имеет другие недостатки, такие как длительное время обработки, высокое потребление тепла и энергии, а также примеси растворителя 4. В последнее время DES, свойства которых аналогичны свойствам ионных жидкостей 3, появились в качестве зеленых растворителей благодаря таким преимуществам, как биоразлагаемость, экологичность, простота синтеза и восстановление после обработки 5. DES представляют собой смеси по меньшей мере одного HBD, такого как молочная кислота, яблочная кислота или щавелевая кислота, и акцептора водородных связей HBA , такого как бетаин или холинхлорид ChCl 6. Взаимодействия HBA-HBD обеспечивают каталитический механизм, который позволяет расщеплять химические связи, вызывая фракционирование биомассы и разделение лигнина. Многие исследователи сообщали о предварительной обработке на основе DES лигноцеллюлозного сырья, такого как ChCl-глицерин на початках кукурузы и стовер 7, 8, ChCl-мочевина и ChCl-щавелевая кислота на пшеничной соломе 9, ChCl-молочная кислота на эвкалиптовых опилках 10 и ChCl-уксусная кислота 11 и ChCl-этиленгликоль на древесине Для повышения эффективности ДЭС предварительную обработку следует сочетать с микроволновой обработкой для ускорения фракционирования биомассы 5. Многие исследователи сообщали о такой комбинированной предварительной обработке DES и микроволновой печи древесины 8 и кукурузы, травы и Мискантуса 5, что дает новое представление о способности DES для лигноцеллюлозного фракционирования и экстракции лигнина за один простой шаг в течение короткого периода. Лигнин представляет собой фенольные макромолекулы, валоризированные в качестве сырья для производства биополимеров и представляющие собой альтернативу для производства химических веществ, таких как ароматические мономеры и олигомеры Кроме того, лигнин обладает антиоксидантной и ультрафиолетовой абсорбционной активностью В нескольких исследованиях сообщалось о применении лигнина в косметических продуктах 14, В данной работе описывается сверхбыстрый подход к расщеплению лигнин-углеводов, поддерживаемый комбинированной DES-микроволновой предварительной обработкой средиземноморских биомасс. Эти биомассы состоят из побочных продуктов сельскохозяйственной пищи, особенно оливкового выжимки и миндальных оболочек. Другими биомассами, которые были исследованы, были биомассы морского происхождения листья Посидонии и агагропиле и биомассы, происходящие из леса сосновые шишки и дикие травы. Основное внимание в этом исследовании было уделено тестированию недорогих зеленых растворителей для оценки влияния этой комбинированной предварительной обработки на фракционирование сырья, изучения его влияния на чистоту и выход лигнина, а также изучения его влияния на молекулярные массы и химические функциональные группы в экстрагированном лигнине. Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian. Химические функции в экстрагированном лигнине инфракрасный фурье-трансформированный. Молекулярная масса экстрагированного лигнина гель-проникающая хроматография. На фиг. Выход лигнина из листьев альфа А был значительно выше, чем выход всех других лигнинов, извлеченных с помощью DES2. Данные о чистоте и выходе лигнина были подвергнуты анализу главных компонентов PCA с учетом двух параметров выход и чистота и 18 обработок. Чистота лигнина положительно коррелировала с обработкой DES1 Ox. Таким образом, результаты PCA подтвердили, что лигнин, экстрагированный с помощью DES1, был самым чистым с самым низким выходом. Лигнин характеризовался содержанием сахара, азота и золы рисунок 5А - С. Общее содержание сахара определяли с помощью газовой хроматографии ГК. Тип идентифицированных сахаров существенно различается рисунок 6А-С ; D-ксилоза и D-глюкоза были наиболее распространенными моносахаридами. Эти результаты показывают, что DES1 был чрезвычайно селективным в экстракции лигнина по сравнению с двумя другими DES, которые извлекли не только лигнин, но и углеводы. Холин хлорид содержит ионы хлорида, которые нарушают внутримолекулярные взаимодействия водородных связей, а карбоксилатные группы в щавелевой кислоте способствуют растворении лигниновых полимеров. Эти результаты доказывают, что азотистые соединения экстрагировали и осаждали с лигнином. Кроме того, кальцинирование лигнина во всех образцах показало, что лигнин, экстрагированный с использованием DES2 и DES3, содержал более высокий неорганический компонент, чем лигнин, экстрагированный с использованием DES1. Эти результаты показывают, что DES1 способствовал экстракции лигнина с высокой чистотой, но с низким содержанием азота, углеводов и золы. Другими словами, лигнин, экстрагированный с использованием DES1 ChCl-щавелевая кислота , был чище, чем лигнин, экстрагированный с использованием DES2 ChCl-молочная кислота и DES3 ChCl-мочевина , который обладает более низкой чистотой и высоким содержанием азота, углеводов и золы. В таблице 1 обобщено распределение молекулярной массы лигнина, проанализированное с помощью гель-проникающей хроматографии GPC и представленное среднечисленной молекулярной массой Mn , средней массовой молекулярной массой Mw и индексом полидисперсности PDI. Значения M w варьировались от 48 до г моль Напротив, лигнин, извлеченный DES2 из сосновых шишек, оливкового жмыха и листьев посидонии, показал более высокий PDI. Более низкая PDI лигнина, извлеченного из aegagropile, указывает на то, что его молекулярная масса более однородна, чем у лигнинов, извлеченных из других биомасс. Химические функциональные группы, присутствующие в экстрагированном лигнине, исследовали с помощью FTIR-спектроскопии рисунок 7A-F. Сильная широкая полоса между 3, и 3, см-1 была отнесена к растягивающим колебаниям OH алкогольных и фенольных гидроксильных групп, участвующих в водородных связях. Сигналы в диапазоне волновых номеров 2,, см-1 были отнесены к алкильным C-H растягивающим колебаниям. Оливковый выжим, листья альфа и миндальные раковины показали более интенсивные полосы, чем другие биомассы. Полос от 2 до 1 см -1 не наблюдалось. Однако этот сигнал отсутствовал в спектрах растворителей рисунок 8В. Сигнал на см-1 возник из колебаний ароматических колец, присутствующих в лигнине, в то время как полоса в см -1 указывала на наличие эфирных групп. Полосам в диапазоне волнового числа 1,, см-1 было присвоено растяжение C-O неароматических спиртов. Полоса при см-1 была отнесена к метиловым заместителем. Результаты показывают, что спектры фракций DES-лигнина показали сигналы при 1,, см-1 и 1,, см-1, назначенные растягивающей вибрации неконъюгированных и сопряженных карбонильных групп соответственно. Однако эти диапазоны диапазонов отсутствовали в трех коммерческих лигнинах: сырых, обработанных содой и лигнинах, экстрагированных щелочью рисунок 8А. Это наблюдение свидетельствует о том, что при его экстракции и солюбилизации некоторые функциональные группы лигнина были сопряжены с щавелевой и молочной кислотами. Рисунок 1: Изучены средиземноморские биомассы. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка. Рисунок 2: Выход лигнина. Рисунок 4: Анализ основных компонентов выхода и чистоты лигнина, извлеченного из средиземноморских биомасс. Рисунок 7: Инфракрасные спектры с преобразованием Фурье образцов лигнина. Рисунок 8: Инфракрасные спектры с преобразованием Фурье. A Лигнин контролирует, B доноры водородных связей. Таблица 1: Молекулярные массы лигнинов. Рисунок S1: Лигнин. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы загрузить этот файл. Рисунок S3: Гранулы лигнина. Рисунок S4: Твердый остаток промыт четыре раза для восстановления максимального содержания лигнина. Рисунок S5: Гель-проникающая хроматограмма контроля лигнина, сырых и щелочно-экстрагированных лигнинов. Рисунок S6: Гель-проникающих хроматограмм образцов лигнина. Рисунок S7: Технологическая схема процесса глубокого эвтектического растворителя DES -микроволнового процесса экстракции лигнина. Это исследование имело много целей; первым из которых было приготовление и использование недорогих зеленых растворителей с характеристиками как ионных жидкостей, так и органических растворителей. Вторая цель состояла в том, чтобы фракционировать биомассу и экстрагировать лигнин за один этап, не требуя предварительных этапов, таких как экстракция экстрагируемых веществ с использованием Soxhlet или гемицеллюлозы с использованием щелочных растворителей, основных или теплофизических методов. Третья цель состояла в том, чтобы восстановить лигнин путем простой фильтрации после обработки, без корректировки рН, а просто путем добавления дистиллированной воды. Результаты сверхбыстрой экстракции лигнина из шести различных источников с использованием микроволнового процесса на основе DES с использованием трех различных DES показывают, что выход экстракции может варьироваться в зависимости от биомассы и природы DES. Например, самый высокий выход извлечения лигнина среди всех трех DES был из оливкового жмыха. За этим последовали урожаи листьев альфа, сосновых шишек и миндальных раковин. Урожайность экстракта была ниже для листьев и шаров Posidonia oceanica. Чистоту лигнина оценивали с использованием методов Класона, Кьельдаля азота , углеводов ГК и золы. Как показано на фиг. Условия экстракции лигнина с помощью DES1 обеспечили высокую чистоту, но низкий выход, что указывает на то, что для положительной корреляции между выходом и чистотой лигнина необходимы улучшения процесса. Выход лигнина может быть улучшен, если продолжительность обработки больше, мощность микроволновой печи увеличена с Вт до Вт или уменьшено соотношение твердое вещество:растворитель Данные о молекулярной массе лигнина дают представление о диссоциации или реполимеризации фрагментов лигнина после лечения. Увеличение Mw лигнина для биомасс наблюдалось после экстракции с использованием микроволновой ДЭС, как это видно, например, в случае листьев посидонии Mw составляет для DES3 и для DES1 , что свидетельствует о том, что деполимеризация происходила во время экстракции лигнина и сопровождалась быстрой реполимеризацией углеродно-углеродного интеръединичения под действием DES. Для этого требуется использование агента захвата, такого как формальдегид, для стабилизации развертывания. При предварительной обработке DES диссоциация лигнина и конденсация являются двумя конкурирующими реакциями. Это указывает на то, что обработка DES улучшает однородность молекулярной массы в лигнине по сравнению с обработкой органическими растворителями. Спектры показывают сигналы при 1,, см-1, присвоенные растягивающей вибрации неконъюгированных карбонильных групп, тогда как пики при 1,, см-1 указывают на вибрацию растяжения сопряженных карбонильных групп. Эти результаты демонстрируют возможность извлечения лигнина с добавленной стоимостью высокой чистоты из средиземноморских биомасс который в настоящее время недооценен и используется либо в качестве корма, либо в качестве почвенной поправки и могут помочь определить оптимальный растворитель DES при обеспечении чистоты лигнина. Например, DES1 продемонстрировал чистейшую экстракцию лигнина, хотя и с более низким выходом, чем тот, который наблюдался с использованием двух других DES. Предложенный способ может быть легко применен благодаря недорогой и зеленой ChCl-щавелевой кислоте глубокой эвтектической растворительной системы. Холин хлорид представляет собой органическую соль, а щавелевая кислота доступна в качестве натурального продукта растений, которые в изобилии отличаются низкой стоимостью. Этот метод сверхбыстрый протокол, который в один этап обеспечивает фракционирование биомассы и извлечение лигнина высокой чистоты применим к любому типу лигноцеллюлозной биомассы, которая имеет химический состав, аналогичный тому, который изучается здесь в лабораторных масштабах с использованием процесса микроволновой печи DES или в пилотном масштабе с использованием процесса DES-ультразвука или конвекционного нагрева. Kammoun, M. To learn more about our GDPR policies click here. If you want more info regarding data storage, please contact gdpr jove. You have already requested a trial and a JoVE representative will be in touch with you shortly. If you need immediate assistance, please email us at subscriptions jove. Please enjoy a free 2-hour trial. In order to begin, please login. You have unlocked a 2-hour free trial now. All JoVE videos and articles can be accessed for free. To get started, a verification email has been sent to email institution. Please follow the link in the email to activate your free trial account. If you do not see the message in your inbox, please check your 'Spam' folder. Your access has now expired. Provide feedback to your librarian. If you have any questions, please do not hesitate to reach out to our customer success team. Login processing JoVE Journal Chemistry. Поместите миндальные раковины Prunus dulcis , полученные в пищевой промышленности, и оливковый жмых Olea europaea L. Биомассы показаны на рисунке 1A-F. Измельчение биомассы Поместите 20 г каждой биомассы в молотковый резак, оснащенный ситом 1 мм. Соберите полученную порошок в 0,25 л и подайте его в молотковый резак, оснащенный ситом 0,5 мм. Соберите порошок в 0,25 л. Комбинированная микроволново-DES обработка Поместите 5 г исходного сырья в микроволновую печь в закрытом политетрафторэтиленовом реакторе. Добавьте 50 мл ДЭС и поместите в образец перемешивающий батончик. Закройте контейнер для микроволновой печи соответствующим колпачком и прикрепите температурный колпачок. Поместите микроволновый контейнер на край поворотного стола, следя за тем, чтобы он постоянно перемешивался. Установите мощность микроволновой печи на Вт в течение 1 мин. Используя подходящие перчатки, доньте контейнер из микроволновой печи и дайте смеси остыть. Повторите эту обработку, используя три DES для каждого образца биомассы. Выделение лигнина Готовят однородный раствор антирастворимого действия, смешивая этанол:вода в соотношении v:v. После центрифугирования фильтруют супернатант богатую лигнином фракцию с помощью стеклянного фильтрующего тигля пористость 4, мкм, диаметр 10 мм. Оставшийся целлюлозный остаток, собранный после центрифугирования, промыть 25 мл раствора антирастворимого. Повторные промывки 4x, а затем собирают и фильтруют промывки через стеклянный фильтр тигель пористость N 4, мкм, диаметр 10 мм. Добавьте отфильтрованную фракцию, богатую лигнином, со ступени 2. Добавьте мл деионизированной воды в концентрированный щелок фракция, богатая лигнином и осадите лигнин центрифугированием. Собрать лигнин в виде гранулы и промыть его 25 мл дистиллированной воды; повторите стирки 4x. Однако количества лигнина, восстановленные с использованием этих DES, были чрезвычайно малы и невосстановимы по сравнению с количествами, полученными с использованием трех других DES. Добавьте приблизительно 30 мг лигнина в боросиликатную стеклянную трубку см. Таблицу материалов и обратите внимание на вес образца. Снимите стеклянную бутылку и дайте ей остыть. Анализ кислотно-нерастворимого лигнина Отфильтруйте гидролизат с помощью тигля под вакуумом. Соберите все твердые вещества в стеклянную бутылку, содержащую деионизированную воду. Промойте тигель 50 мл деионизированной воды. Достаньте тигель из духовки, поместите его в адсорбатор и дайте остыть. Взвесьте образец. Снимите его и поместите в адсорбатор. Используйте дистиллированную воду в качестве заготовки. При необходимости разбавьте образец. Содержание азота в экстрагированном лигнине Приготовление раствора щелочей В объемной колбе объемом 2,5 л взвесьте 1 кг гидроксида натрия NaOH и добавьте деионизированную воду до отметки. Поместите магнитный стержень в колбу и перемешивайте до тех пор, пока NaOH полностью не растворится. Таблицу материалов в объемную колбу объемом 5 л, добавьте деионизированную воду до отметки 5 л, поместите магнитный стержень и перемешивайте до тех пор, пока содержимое не растворится. Приготовление приемного раствора В объемной колбе объемом 5 л растворить г H 3 BO 3 борной кислоты в деионизированной воде и довести объем до отметки. Взвесьте мг бромокресола зеленого в объемной колбе объемом мл и добавьте технический метанол до отметки. Взвесьте мг метилового красного в объемной колбе объемом мл и добавьте технический метанол до отметки. В емкость влейте 5 л раствора H3 BO 3 со ступени 4. Хорошо встряхните приемный раствор в течение 30 мин. Если цвет не зеленый, добавьте 50 мл 1 N раствора NaOH. Поместите пробоотборники на стойку, поместите четыре пустые трубки в четыре угла стойки и заполните отверстия если таковые есть стойки пустыми трубками. Поместите стойку в предварительно нагретый реактор, накройте систему всасывания и откройте водяной насос. Через 2 ч выключите нагрев, извлеките образцы и поместите их на металлическую опору. Дайте стойке остыть в течение примерно 40 минут при включенной системе всасывания. Процедура дистилляции Kjeldhal Включите дистиллятор Kjeldahl. Разрешить выполнение самотестов до тех пор, пока на экране не появится selection. Переключитесь в ручной режим, вставьте пустую трубку и закройте раздвижную дверь. Продувку титранта бюретки 0,02 Н Н Н 2 SO 4 поднимите крышку , нажав на нее снизу и сверху несколько раз, и устраните пузырьки воздуха из труб, сжав трубку флакона H 2 SO 4. Закройте капот. Продувка приемного раствора H 3 BO 3x. Добавьте воду в 3 раза и переключитесь на активный пар 10 мин. Переключитесь на программу анализа Kjeldahl 1. Введите Бланко с помощью стрелок на уровне строки результата. Вставьте трубку. Начните с четырех пробелов и рассчитайте их средние значения. Переключитесь на мл титранта в строке результата. Вставьте трубку и обратите внимание на количество используемого H 2 SO 4. В конце каждого титрования устройство автоматически опорожняет и очищает трубку. Вычисление процента N. Оставьте их остывать в адсорбаторе. Взвесьте тигель и запишите его номер. Добавьте приблизительно 1 г порошка образца. Снимите тигли, поместите их в адсорбатор и взвесьте. Приготовление раствора MIX Поместите по 20 мг ксилозы, арабинозы, римнозы, глюкозы, галактозы, маннозы и 2-дезоксиглюкозы в объемную колбу объемом мл и заполните до отметки мл деионизированной водой. Охладите образец, добавьте 1 мл 15 М гидроксида аммония NH 4 OH и проверьте рН, чтобы убедиться, что он нейтральный или щелочной. Добавьте ровно 1 мл внутреннего стандарта 2-дезоксиглюкозы к каждому образцу. Восстановление и ацетилирование моносахаридов в ацетат альдитола Возьмите мкл раствора из шага 6. Возьмите мкл контрольного раствора MIX и поместите его в специальные пробирки. Снимите трубку с водяной бани и добавьте 0,6 мл ледниковой уксусной кислоты. Добавьте приблизительно 0,4 мл 1-метилимидазола и приблизительно 4 мл уксусного ангидрида. Анализируйте данные. Используйте следующую формулу для расчета коэффициента отклика РЧ. Используйте следующую формулу для расчета массы моносахаридов. M: Область пика моносахаридов в анализируемом образце M. Химические функции в экстрагированном лигнине инфракрасный фурье-трансформированный Для идентификации химических функциональных групп в экстрагированном лигнине используйте FT-IR-спектрометр, оснащенный модулем аттенуированного общего отражения ATR. Откройте программное обеспечение для спектроскопии и настройте параметры: разрешение 4 см -1, время сканирования образца 32, время фонового сканирования 16, сохранение данных от до см -1, коэффициент пропускания спектра результата. Не добавляйте образец; нажмите фоновый одноканальный. Теперь поместите 1 мг образца на кристалл и нажмите на образец одноканальным. Обработайте полученные спектры. Возьмите 5 г LiCl в объемной колбе объемом 1 л, добавьте DMF до калибровочной линии и перемешайте содержимое до получения однородной жидкости. Центрифугу в 10 мл центрифужной трубки и разделите растворимую фракцию во флакон. Центрифугу в стеклянных трубках боросиликатного по 10 мл и переложите растворимую фракцию во флакон. Подготовьте высокоэффективную жидкостную хроматографическо-ультрафиолетовую УФ систему. Откройте систему данных и проверьте УФ-детектор. Продувки системы дистиллированной водой. Остановите поток и закройте продувочный клапан. Остановите скорость потока. Установите столбец, которому предшествует защитный столбец см. Таблицу материалов. Вводят по 30 мкл каждого образца в течение 40 мин на длине волны нм. Обработайте полученные данные, и рассчитайте распределение масс с помощью калибровочной линии. Рассчитайте среднечислую молекулярную массу Mn , среднюю молекулярную массу Mw и индекс полидисперсности PDI. Mi: молекулярная масса цепи Ni: количество цепей для этой молекулярной массы 9. Выполните односторонний дисперсионный анализ ANOVA и сравните средства, используя множественный сравнительный тест Туки. Выполните анализ главных компонентов PCA. Play Video. Cite this Article Kammoun, M. Before you can use the favorites feature you must sign in or create an account. Continue with Shibboleth or Forgot Password? Please enter your email address so we may send you a link to reset your password. You might already have access to this content! Please enter your Institution or Company email below to check. Please enter an institutional email address. Check access. Create Account. Forgot Password? Reset Password. Phone number. Request trial. Thank You! A JoVE representative will be in touch with you shortly. Waiting for verification email? Please click here to activate your free 2-hour trial. If you do not wish to begin your trial now, you can log back into JoVE at any time to begin. Enable Javascript for audio controls. Get cutting-edge science videos from J o VE sent straight to your inbox every month. We use cookies to enhance your experience on our website. Continue Learn more Close. CTQ coded A22 1. Vertex 70 Bruker apparatus equipped with an attenuated total reflectance ATR module.
Вы точно человек?
Италия Фоджа купить Бошки закладки
Наркотики бесплатные пробы Льеж
Героин хмурый фенатанил бесплатные пробы Капчагай
Наркотики бесплатные пробы Льеж
Кения купить Альфа-ПВП закладки
Сверхбыстрая экстракция лигнина из необычных средиземноморских лигноцеллюлозных остатков
Наркотики бесплатные пробы Льеж
Альфа-ПВП купить наркотик Заволжье
Сверхбыстрая экстракция лигнина из необычных средиземноморских лигноцеллюлозных остатков
Вы точно человек? Пользовательское соглашение Политика конфиденциальности.
Наркотики бесплатные пробы Льеж
Наркотики бесплатные пробы Льеж
Тельфс & Зеефельд купить Ганджубас
Сверхбыстрая экстракция лигнина из необычных средиземноморских лигноцеллюлозных остатков
Наркотики бесплатные пробы Льеж
Метадон купить наркотик Алания