К ОБНАРУЖЕНИЮ ТРАМАДОЛА В МОЧЕ МЕТОДОМ ТОНКОСЛОЙНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

К ОБНАРУЖЕНИЮ ТРАМАДОЛА В МОЧЕ МЕТОДОМ ТОНКОСЛОЙНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

К ОБНАРУЖЕНИЮ ТРАМАДОЛА В МОЧЕ МЕТОДОМ ТОНКОСЛОЙНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

К ОБНАРУЖЕНИЮ ТРАМАДОЛА В МОЧЕ МЕТОДОМ ТОНКОСЛОЙНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

______________

______________

✅ ️Наши контакты (Telegram):✅ ️


>>>🔥🔥🔥(ЖМИ СЮДА)🔥🔥🔥<<<


✅ ️ ▲ ✅ ▲ ️✅ ▲ ️✅ ▲ ️✅ ▲ ✅ ️


ВНИМАНИЕ!!!

ИСПОЛЬЗУЙТЕ ВПН, ЕСЛИ ССЫЛКА НЕ ОТКРЫВАЕТСЯ!

В Телеграм переходить только по ССЫЛКЕ что ВЫШЕ, в поиске НАС НЕТ там только фейки !!!

______________

______________

К ОБНАРУЖЕНИЮ ТРАМАДОЛА В МОЧЕ МЕТОДОМ ТОНКОСЛОЙНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ










К ОБНАРУЖЕНИЮ ТРАМАДОЛА В МОЧЕ МЕТОДОМ ТОНКОСЛОЙНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

Способы диагностики наркотической интоксикации

К ОБНАРУЖЕНИЮ ТРАМАДОЛА В МОЧЕ МЕТОДОМ ТОНКОСЛОЙНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

Глава 8. Обнаружение и определение индивидуальных лекарственных и наркотических веществ

К ОБНАРУЖЕНИЮ ТРАМАДОЛА В МОЧЕ МЕТОДОМ ТОНКОСЛОЙНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

Метод тонкослойной хроматографии. Method of thin-layer chromatography. МКС Обозначение НТД, на который дана ссылка. ГОСТ Май г. Настоящий стандарт распространяется на химические реактивы и устанавливает метод проведения испытания, основанный на тонкослойной хроматографии. Термины, применяемые в стандарте, и их пояснения приведены в приложении 2. Рекомендуемые области применения метода приведены в приложении 3. При проведении испытаний должны быть соблюдены требования ГОСТ В нормативно-технической документации на испытуемый реактив должны быть указаны следующие данные:. Описание приготовления испытуемого раствора. Предварительная обработка при необходимости. Используемые растворители или смесь. Применяемые реактивы и растворы. Способ хроматографирования. Тип хроматографической пластинки, материал и толщина слоя сорбента, тип сорбента, размер частиц, дополнительные данные о приготовлении сорбента, его активации, хранении при необходимости. Время насыщения хроматографической камеры парами подвижной фазы. Объем испытуемого раствора, наносимый на пластинку. Температура, при которой проводят хроматографирование при необходимости. Критерии окончания процесса хроматографирования. Способ проявления хроматограмм и реагенты для проявления при необходимости. Способ оценки хроматограмм. Вещества сравнения, используемые для оценки при необходимости. Аппаратура для количественной оценки разделенных компонентов при необходимости. Метод заключается в разделении на тонком слое сорбента смеси веществ в потоке растворителя, основанном на различной скорости перемещения компонентов смеси. Камера сосуд хроматографическая, закрытая герметичной крышкой. Микропипетка вместимостью 0,, см или микрошприц вместимостью не более 0,01 см. Пластинки хроматографические из стекла, пластмассы, алюминия с тонким слоем подходящих материалов, пригодных для хроматографирования например, силикагеля, кизельгура, окиси алюминия, целлюлозы. Аппарат для подготовки пластинок. Лампа ультрафиолетовая для обнаружения веществ с использованием флуоресценции при длинах волн от до нм. Устройство для сканирования пятен на сорбенте. Приготовление пластинок для тонкослойной хроматографии Предварительная очистка пластинок, размеры пластинок, толщина слоя сорбента, средний размер частиц сорбента или его тип, а также сушка, хранение пластинок и предварительное приготовление для испытания должны быть приведены в нормативно-технической документации на испытуемый реактив. Пластинки готовят одним из способов, указанных ниже. Разравнивание сухого материала на соответствующей подложке пластинки насыпной способ. Приготовление нанесением суспензии сорбента в смеси со связующим веществом или флуоресцентным индикатором на пластинку в соответствии с нормативно-технической документацией на испытуемый реактив. Применение готовых пластинок или готового набора пластинок, приготовленных в соответствии с инструкцией, приложенной к набору. Нанесение пробы В точки, отмеченные на линии старта, наносят с помощью калиброванной микропипетки или микрошприца 0,, см испытуемых растворов, если в нормативно-технической документации на испытуемый реактив нет других указаний. При необходимости, в точки на линии старта наносят таким же образом растворы веществ, соответствующих предполагаемым компонентам смеси, для идентификации и количественной оценки этих примесей. При нанесении пробы не должна быть нарушена целостность слоя сорбента. Оптимальный диаметр пятен нанесенных проб должен быть мм. Допускается наносить пробу не в виде точки, а чертой с применением микропипетки или капилляра. На тонкослойной пластинке отмечают высоту продвижения фронта подвижной фазы и записывают данные о каждой пробе, подвижной фазе и дату анализа. При необходимости нанесения больших объемов испытуемого раствора рекомендуется нанесение пятен хроматографическим шприцем, порциями по 0, см и подсушивание пятна холодным воздухом. После нанесения пробы растворителю дают свободно испариться. Хроматографическое разделение веществ проводят в хроматографической камере, в замкнутой системе, насыщенной парами подвижной фазы. Если в нормативно-технической документации на испытуемый реактив нет других указаний, хроматографирование проводят, как указано ниже. Предварительно готовят подвижную фазу элюирующую систему , раствор пробы, а также растворы веществ сравнения или растворы предполагаемых примесей и элюирующую систему вводят в камеру. Тонкослойную пластинку с нанесенной пробой и, при необходимости, с веществами сравнения или предполагаемыми примесями после испарения растворителя при комнатной температуре помещают в камеру, насыщенную парами подвижной фазы, подвергают элюированию подвижной фазой. Элюируют до тех пор, пока фронт подвижной фазы не окажется на предварительно обозначенной высоте, примерно в мм от верхнего края пластинки. Хроматографическую пластинку вынимают и сушат. После высушивания хроматограмму можно элюировать повторно или тем же самым растворителем повторная хроматография или другим растворителем последовательная хроматография. Восходящая хроматография Хроматографическую пластинку помещают в хроматографическую камеру таким образом, чтобы ее нижний конец был погружен в слой подвижной фазы на дне сосуда, как показано на черт. Горизонтальная хроматография Испытание проводят, как показано на черт. Нисходящая хроматография В камере для нисходящей хроматографии должен быть сосуд, в который помещают подвижную фазу. Подвешенную хроматографическую пластинку соединяют вблизи линии старта бумажным фитилем с подвижной фазой сосуда, как показано на черт. По окончании разделения хроматограмму вынимают из камеры, отмечают фронт мягким карандашом и сушат в таком положении, как при элюировании, при комнатной температуре или в горячем воздухе кроме пластинок, приготовленных насыпным способом, которые сушат в горизонтальном положении. Продолжительность сушки зависит от скорости испарения подвижной фазы и химической стабильности хроматографируемых веществ. Проявление компонентов на хроматограмме проводят одним из способов, приведенных ниже. Физические методы Визуально при дневном свете отмечают на хроматограмме положение пятен цветных веществ. При наличии флуоресцирующих веществ проявление проводят в УФ-свете. Химические методы Хроматограмму проявляют жидкими и газообразными проявителями, используя реакцию имеющихся на хроматограмме соединений с подходящим реагентом-проявителем с образованием окрашенного или флуоресцирующего вещества. Жидкие проявители наносят пульверизатором или используют реагенты в аэрозольной упаковке; газообразные проявители применяют, поместив хроматограмму в пары проявителя. Хроматограмму кладут горизонтально на лист фильтровальной бумаги или оставляют в вертикальном положении и опрыскивают мелкими каплями туманом проявителя всю площадь хроматограммы. При проявлении газообразным проявителем хроматограмму подвешивают в камере, в которую помещен летучий реагент например, кристаллы йода , или на дне которой проявитель получают химическим путем например, оксиды азота получают путем добавления твердого нитрита натрия к раствору соляной кислоты. Биологические методы Хроматограмму проявляют, используя биологическую активность хроматографируемых веществ. Качественная оценка хроматограммы заключается в определении положения пятна или полосы, которое характеризуется значением :. Определение количества искомого компонента в пробе проводят путем сравнения размеров и интенсивности окраски его пятна с пятнами вещества сравнения, нанесенными на хроматографическую пластинку в интервале значений концентрации, указанных в нормативно-технической документации на испытуемый реактив, и обработанными в условиях испытания. Оценку проводят визуально или с помощью аппаратуры например, денситометра, устройства для сканирования пятен компонентов на пластинке или путем элюирования пятен и последующего фотометрического определения оптической плотности растворов. Хроматограммы хранят в условиях, препятствующих появлению взаимных оттисков хроматограмм например, с прокладками из фильтровальной бумаги. Если характер пятен позволяет, то на хроматограммы наносят слой быстросохнущего лака. В случае необходимости проводят зарисовку контуров хроматограммы или фотографирование. Камера для восходящей хроматографии. Камера для нисходящей хроматографии проточная хроматография. Камера для горизонтальной хроматографии. Физико-химический метод разделения, при котором на хроматографической пластинке разделяется смесь веществ между неподвижной и подвижной фазой. Тонкий слой подходящих материалов, разработанных для определенной методики, находящийся на несущей пластинке из стекла, алюминия, пластмассы и т. Фаза, обеспечивающая перемещение разделяемых веществ по тонкому слою. Перемещение подвижной фазы по сорбенту с нанесенной пробой. Место, которого достигла в данный момент подвижная фаза относительно старта. Выявление наличия хроматографируемых веществ химическим, физическим, биологическим или другим способом. Величина, определяемая отношением расстояния от центра концентрационного максимума пятна или полосы до старта к расстоянию от фронта подвижной фазы до старта. Величина, определяемая отношением расстояния от центра концентрационного максимума пятна или полосы испытуемого вещества до старта к расстоянию от центра пятна или полосы вещества сравнения до старта. Доказательство присутствия ожидаемого вещества или его примеси, оценка хроматографической однородности в сопоставлении с известным веществом сравнения. Идентификация вещества, подтверждение идентичности испытуемого вещества с известным веществом. При данных условиях для каждого соединения характерно определенное местонахождение на хроматограмме и определенное поведение при проявлении окраска, флуоресценция. Идентификацию проводят непосредственным сравнением пятен известного и испытуемого вещества на одной хроматограмме или элюированием вещества из хроматограммы и последующей идентификацией, например измерением соответствующего спектра. Определение одного или более веществ в смеси, проводимое одним из следующих методов:. Установление структуры органических соединений. Сочетанием реакций разложения с хроматографической идентификацией продуктов этих реакций можно установить структуру молекулы. Методы приготовления реактивов и растворов: Сб. Политика конфиденциальности персональных данных. Текст документа Статус Скан-копия. Поиск в тексте. Данный документ представлен в формате djvu. Method of thin-layer chromatography МКС В нормативно-технической документации на испытуемый реактив должны быть указаны следующие данные: 1. Качественная оценка хроматограммы заключается в определении положения пятна или полосы, которое характеризуется значением : , где - расстояние от центра пятна до стартовой линии, мм; - расстояние от фронта растворителя до стартовой линии, мм, или значением : , где - расстояние от центра пятна вещества сравнения до стартовой линии, мм. Камера для восходящей хроматографии Камера для восходящей хроматографии 1 - хроматографическая камера; 2 - фильтровальная бумага; 3 - хроматограмма; 4 - растворитель; 5 - стеклянная палочка Черт. Камера для восходящей хроматографии Камера для восходящей хроматографии 1 - пластинки хроматографической камеры; 2 - хроматограмма; 3 - лодочка хроматографической камеры; 4 - растворитель Черт. Камера для нисходящей хроматографии проточная хроматография Камера для нисходящей хроматографии проточная хроматография 1 - хроматограмма; 2 - хроматографическая камера; 3 - бумажный фитиль; 4 - растворитель Черт. Камера для горизонтальной хроматографии Камера для горизонтальной хроматографии 1 - хроматографическая камера; 2 - хроматограмма сорбентом вниз ; 3 - фильтровальная бумага; 4 - растворитель; 5 - стеклянная палочка Черт. Определение одного или более веществ в смеси, проводимое одним из следующих методов: а субъективной оценкой хроматограммы например, с помощью калибровочной хроматограммы ; б объективной оценкой хроматограммы; в последующим определением некоторых компонентов физико-химическим методом например, по элюировании вещества с хроматограммы его определяют спектрофотометрически. ГОСТ Реактивы. Данный документ представлен в виде сканер копии, которую вы можете скачать в формате pdf или djvu. Политика конфиденциальности персональных данных Версия сайта: 2. Мобильное приложение. Регистрация Забыли пароль? Восстановление пароля. Регистрация Вспомнили? Получаем главу, подождите. Номер пункта. Тонкослойная хроматография. Неподвижная фаза закрепленная, стационарная. Слой сорбента или фаза, закрепленная на носителе. Подвижная фаза мобильная, элюирующая система. Старт точка старта. Место, на которое наносится раствор испытуемой пробы. Элюирование проявление. Обнаружение детектирование. Результат хроматографического разделения. Федеральное законодательство Региональное законодательство Образцы документов Все формы отчетности Законодательство в вопросах и ответах.

Дочь 15 лет курила гашиш

Амфетамин реакция

К ОБНАРУЖЕНИЮ ТРАМАДОЛА В МОЧЕ МЕТОДОМ ТОНКОСЛОЙНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

Избербаш купить Мефедрон [Cristalius 2.0]

Закладки MDMA в Новосибирске

Закладки трамадол вГорнозаводске

ГОСТ 28366-89

Гашиш тор

Закладки спайс в Барабинске

К ОБНАРУЖЕНИЮ ТРАМАДОЛА В МОЧЕ МЕТОДОМ ТОНКОСЛОЙНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

Закладки гашиш в Щербинке

Закладки героин в Котовске

Лазарян Джон Седракович. Курск, ул. Маркса, д. Пятигорск, пр. Калинина, Актуальность темы. В настоящее время доля ненаркотических анальгетиков в структуре применяемых в медицинской практике лекарственных препаратов значительна. Из этой группы лекарственных препаратов наиболее широко применяются как в медицинской практике по назначению врача, так и самостоятельно: ибупрофен, кеторолак, метамизол натрия, нефопам, парацетамол и трамадол. При определённых условиях передозировка, многочисленные торговые названия препаратов, взаимное потенцирование действия приём изучаемых анальгетиков приводит к острым отравлениям, в том числе со смертельным исходом, что определяет их важное токсикологическое значение. По данным литературы разработаны ряд методик анализа отдельных вышеуказанных анальгетиков в различных биологических объектах. Однако по настоящее время отсутствуют методики их химико-токсикологического анализа при комбинированных отравлениях. В связи с этим разработка методик дифференциальной диагностики указанных ненаркотических анальгетиков при химико-токсикологическом исследовании мочи является актуальной проблемой. Цель исследования: разработка схемы химико-токсикологического анализа ибупрофена, кеторолака, метамизола натрия, нефопама, парацетамола и трамадола в моче. Задачи исследования:. Научная новизна работы. Предложен методологический подход к разделению и идентификации изучаемых анальгетиков ибупрофен, кеторолак, метамизол натрия, нефопам, парацетамол, трамадол при направленном химико-токсикологическом анализе с использованием комплекса химических и физико-химических методов. Разработана методика количественного определения ибупрофена, кеторолака, метамизола, нефопама, парацетамола и трамадола методом ВЭЖХ в извлечениях из мочи как индивидуально, так и в различных сочетаниях. Дана валидационная оценка данной методики по основным критериям линейность, специфичность, предел обнаружения, прецизионность, правильность, предел количественного определения. Теоретически обоснованы и экспериментально подтверждены условия изолирования изучаемых анальгетиков из водных растворов с последующей разработкой способов их выделения из мочи. Установлена оптимальная кратность экстракции, изучено влияние условий гидролиза на стабильность указанных лекарственных веществ, что позволило разработать методики их изолирования из мочи как индивидуально, так и при различных сочетаниях. Возможность использования разработанной схемы химико-токсикологического анализа изучаемых анальгетиков была подтверждена на лабораторных животных крысах. Разработанная схема химико-токсикологического анализа ХТА ибупрофена, кеторолака, метамизола, нефопама, парацетамола и трамадола позволяет достоверно диагностировать факт отравления и оценить его степень. Апробация работы. По теме диссертации опубликовано 11 научных работ, в том числе две в журналах, рекомендованных ВАК РФ. Структура и объем работы. Диссертационная работа изложена на страницах и состоит из введения, обзора литературы, четырёх глав экспериментальной части, общих выводов, списка литературы и приложения. В тексте содержится 31 таблица и 28 рисунков. Список цитируемой литературы включает источников, из них 53 на иностранных языках. В химико-токсикологическом анализе для идентификации лекарственных веществ принято проводить исследование в два этапа: предварительное и основное. Оптимальными проявителями для детекции зон адсорбции изучаемых анальгетиков являются УФ свет нм с последующей обработкой пластин реактивом Драгендорфа. При этом предел обнаружения составил от 0,2 до 1,5 мкг в пробе. Полученные результаты представлены в таблице 1. Полученные результаты могут быть использованы при хроматографическом исследовании для выбора систем растворителей как при направленном, так и при ненаправленном анализе. В случае ненаправленного группа анальгетиков анализа на исследуемые лекарственные вещества использован модифицированный вариант метода ТСХ — скрининга, предложенного проф. Результаты исследования представлены в таблице 2. В результате проведённого анализа каждому исследуемому анальгетику соответствует определённый порядок чисел, в зависимости от системы растворителей и порядкового номера зоны. Данные таблицы свидетельствуют о том, что при проведении хроматографического исследования извлечений из мочи в четырех системах растворителей можно предположить наличие одного или нескольких изучаемых анальгетиков при любых их сочетаниях. В случае получения результатов, не соответствующих данным, приведенным в таблице, можно сделать заключение об отсутствии изучаемых анальгетиков и не проводить их подтверждающее исследование. Основное исследование изучаемых анальгетиков с помощью химических и физико-химических методов. В химико-токсикологическом анализе используются хромогенные и микрокристаллоскопические реакции, в случае, если объектом исследования является вещественное доказательство в виде лекарственного препарата одного из изучаемых анальгетиков; искомое вещество выделено из смеси лекарственных веществ или биологического объекта в виде индивидуального соединения. В результате исследования нами выбраны наиболее характерные хромогенные и микрокристаллоскопические реакции на изучаемые анальгетики. Таким образом разработаны методики идентификации изучаемых анальгетиков с помощью хромогенных и микрокристаллоскопических реакций, с достаточной чувствительностью, хорошей воспроизводимостью и экспрессностью. Детектор: масс-спектрометрический квадрупольный МSD , тип ионизации: электронный удар 70 эв , температура ионного источника — С, масс-фильтра — С. Результаты приведены в таблице 4. Метод ВЭЖХ нами использован как для идентификации, так и для количественного определения исследуемых анальгетиков. Селективность данной методики при анализе смеси изучаемых анальгетиков была подтверждена с помощью расчёта коэффициента разделения пиков, которые составили: метамизол — парацетамол 2,13 , парацетамол — трамадол 7,64 , трамадол — нефопам 3,95 , нефопам — кеторолак 6,12 , кеторолак — ибупрофен 10, Для количественного определения исследуемых анальгетиков предложена методика ВЭЖХ анализа. Условия хроматографирования приведены выше. Расчет проводили по площади пика с использованием внешнего стандарта. Разработанную методику на водных растворах оценивали по следующим валидационным характеристикам: специфичность, линейность, прецизионность повторяемость , правильность, предел количественного определения. Специфичность методики определяли набором хроматограмм растворов стандартных образцов изучаемых лекарственных веществ и извлечений из модельной и контрольной проб мочи. Полученные результаты свидетельствуют о специфичности разработанной методики. Контроль линейной зависимости по каждому исследуемому объекту проводили с помощью расчета коэффициента корреляции, значения которых было не менее 0,99, что позволяет использовать данную методику для количественного определения изучаемых лекарственных веществ в указанном диапазоне концентраций. Для установления прецизионности готовили растворы стандартных образцов изучаемых анальгетиков в шести повторностях. Результаты анализа приведены в таблице 5. Полученные результаты анализа приведены в таблице 6. Результаты определения свидетельствуют о том, что методика не отягощена систематической ошибкой, поскольку соблюдается неравенство tвыч. В химико-токсикологическом анализе важное значение имеет способ изолирования токсического вещества из биологического объекта. Поэтому для максимального извлечения исследуемого вещества необходимо предварительно установить оптимальные условия его изолирования. При изолировании лекарственных веществ из биологических объектов на степень экстракции влияют рН среды, природа органического растворителя, наличие электролита и др. Полученные результаты, а также данные литературы нами были учтены при разработке методики изолирования изучаемых анальгетиков. Так как при ненаправленном химико-токсикологическом анализе изолирование лекарственных веществ проводят при значениях рН среды 2—3 и 9—10, мы посчитали необходимым предварительно определить условия изолирования изучаемых лекарственных веществ из водных растворов. Экстракцию проводили хлороформом и этилацетатом, с электролитом и без электролита, время экстракции 5 мин. Наличие электролита существенно повышает степень экстракции метамизола, нефопама и парацетамола. Поэтому с целью повышения степени экстракции ибупрофена, кеторолака, метамизола, нефопама, парацетамола и трамадола из мочи при экспертном исследовании, необходимо проводить гидролиз коньюгатов в биологической жидкости. Результаты исследования представлены в таблице 7. В связи с этим нами разработаны методики изолирования изучаемых анальгетиков с максимальным выходом из кислой среды, из щелочной среды и в случае их совместного присутствия, схемы которых приведены ниже. Проведенные исследования показали, что комбинированное использование разработанных методик позволяет надежно идентифицировать изучаемые анальгетики. Следующим этапом исследования явилось количественное определение изучаемых лекарственных веществ с помощью ранее разработанной методики ВЭЖХ - анализа и её валидация. Линейность методики определяли по модельным пробам исследуемых анальгетиков в моче. Установлено, что зависимость площади пика от концентрации исследуемых веществ имеет линейный характер. Коэффициент корреляции во всех случаях составляет не менее 0, Результаты определения представлены в таблице 8. Далее, нами проведена сравнительная оценка методик количественного определения изучаемых лекарственных веществ в модельной пробе мочи и водных растворах с учетом степени их экстракции. Исследование проводили на трёх уровнях концентраций, в трёх повторностях, соответствующих их минимальной терапевтической, максимальной суточной и токсической дозам. Полученные результаты приведены в таблице 9. Данные таблицы свидетельствуют о том, что на всех трех уровнях концентраций анализируемых модельных проб мочи с учётом коэффициента пересчета получены результаты, сопоставимые с результатами их количественного определения в водных растворах. Апробация методики химико-токсикологического анализа изучаемых анальгетиков на лабораторных животных. Разработанная схема изолирования изучаемых анальгетиков, их идентификация и количественное определение была апробирована на лабораторных животных — белых беспородных крысах — самцах массой — граммов. Экспериментальные исследования при работе с лабораторными животными проводились с соблюдением этических норм. Сбор мочи у крыс проводили в течение 12 часов. Отобранные объекты по 5 мл были подвергнуты изолированию с последующей идентификацией и количественным определением. Полученные результаты свидетельствуют о том, что комплексное использование указанных методов позволяет достоверно идентифицировать изучаемые лекарственные вещества в моче крыс. Далее нами проведено количественное определение изучаемых анальгетиков в моче лабораторных животных с помощью ранее разработанной методики ВЭЖХ анализа. Полученные данные представлены в таблице При введении крысам смеси всех изучаемых анальгетиков в терапевтических дозах, было определено их количественное содержание за исключением парацетамола. Данный факт, очевидно связан с тем, что всасывание парацетамола в присутствии пяти исследуемых лекарственных веществ замедленно и его содержание ниже предела количественного определения методики. Поскольку отравление всей смесью изучаемых лекарственных веществ маловероятно, то разработанная методика позволит надежно идентифицировать комбинированные отравления, в том числе и парацетамолом. Таким образом, разработанная схема химико-токсикологического анализа позволяет надежно проводить дифференциальную диагностику отравлений ибупрофеном, кеторолаком, метамизолом, нефопамом, парацетамолом и трамадолом индивидуально и при сочетанном применении. Схема химико-токсикологического анализа ибупрофена, кеторолака, метамизола, нефопама, парацетамола и трамадола представлена на рисунке 1. Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам. Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам , мы в течении рабочих дней удалим его. Системы растворителей Хроматографические зоны 1 2 3 система I S1 метамизол нефопам трамадол морфин тримепередин кодеин парацетамол флупертин кеторолак ибупрофен система II S2 нефопам кодеин флупиртин трамадол тримеперидин - система III S3 - метамизол ибупрофен кеторолак парацетамол нефопам трамадол морфин кодеин тримеперидин флупиртин система IV S4 нефопам парацетамол метамизол морфин тримеперидин кодеин флупиртин ибупрофен кеторолак трамадол. Вещество Метрологические характеристики, tтабл.

К ОБНАРУЖЕНИЮ ТРАМАДОЛА В МОЧЕ МЕТОДОМ ТОНКОСЛОЙНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

Все фильмы про наркотики

Kratom Правовой статус и законы для покупки онлайн

Закладки метамфетамин в Ярославле

что такое ТСХ - СКРИНИНГ. ЭТО ВОПРОС ИЗ РАЗДЕЛА ТОКСИКОЛОГИЧЕСКОЙ ХИМИИ

MDMA в Нарткала

Закладки амфетамин в Задонске

К ОБНАРУЖЕНИЮ ТРАМАДОЛА В МОЧЕ МЕТОДОМ ТОНКОСЛОЙНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

Закладки метамфетамин в Ялте

Закладки гашиш в Томске

К ОБНАРУЖЕНИЮ ТРАМАДОЛА В МОЧЕ МЕТОДОМ ТОНКОСЛОЙНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

Закладки стаф в Кропоткине

Report Page