Героин бесплатные пробы Гент
Героин бесплатные пробы ГентГероин бесплатные пробы Гент
• • • • • • • • • • • • • • • • •
Героин бесплатные пробы Гент
• • • • • • • • • • • • • • • • •
Гарантии ❗ Качество ❗ Отзывы покупателей ❗
• • • • • • • • • • • • • • • • •
👇 👇 👇 👇 👇 👇 👇 👇 👇 👇 👇 👇
Наши контакты:
▶️▶️▶️ (НАПИСАТЬ ОПЕРАТОРУ В ТЕЛЕГРАМ)️ ◀️◀️◀️
👆 👆 👆 👆 👆 👆 👆 👆 👆 👆 👆 👆
• • • • • • • • • • • • • • • • •
🚩 ИСПОЛЬЗУЙТЕ ВПН (VPN), ЕСЛИ ССЫЛКА НЕ ОТКРЫВАЕТСЯ!
🚩 В Телеграм переходить только по ссылке что выше! В поиске тг фейки!
• • • • • • • • • • • • • • • • •
Героин бесплатные пробы Гент
Дополнительная информация о доступе к услугам здравоохранения. Дополнительная информация о доступе к услугам здравоохранения Ниже приведены контактные данные врачей. Контакты можно фильтровать по теме. Planning familial. Planning familial также помогает жертвам насилия. Найти ближайшее отделение planning familial:. Rutgershuis Oost. Анонимное предоставление медицинских услуг и информации о контрацепции, девственности и сексуальности. Cellebroersstraat 11 Rue des Alexiens, Brussel. Violett Antwerpen. Verversrui 3, Antwerpen. Violett Gent. Brabantdam B, Gent. Violett Hasselt. Ertbeekstraat 34, Hasselt. Вы можете посетить семейного врача в общественном центре здравоохранения. В центрах здравоохранения работают и другие специалисты по уходу, такие как медсестры и социальные работники. Помощь предоставляется бесплатно. Найти ближайший общественный центр здравоохранения:. В Бельгии к гинекологу можно записаться без направления от семейного врача. При этом семейный врач может помочь вам в поиске гинеколога. Семейный врач. С семейным врачом можно обсудить практически все интимные проблемы. При необходимости семейный врач направит вас к узкому специалисту. Найти ближайшего семейного врача:. Вы здесь: Домой Справка.
Горно-Алтайск купить Амфетамин закладки
Болезнь Емелина могла быть вызвана передозировкой лекарствами
Закладки Мефедрон Красноуральск
Героин бесплатные пробы Гент
Героин бесплатные пробы Гент
Бронхоальвеолярное спазмы легких у мышей для анализа воспалительной клеточной инфильтрации
Ганджубас купить наркотик Алтуфьевский
Героин бесплатные пробы Гент
Симферополь Крым купить Кокаин
Бронхоальвеолярное спазмы легких у мышей для анализа воспалительной клеточной инфильтрации
Состояние здоровья легкого отражается типом и числом иммунных клеток, которые присутствуют в бронхиолах легких. Мы описываем метод бронхоальвеолярного лаважа, который позволяет изолировать и исследовать неадгезивные клетки и растворимые факторы из нижних дыхательных путей мышей. Bronchoalveolar Lavage BAL - экспериментальная процедура, которая используется для исследования клеточного и бесклеточного содержимого просвета легких ex vivo, чтобы получить представление о текущем состоянии болезни. Здесь описывается простой и эффективный метод выполнения БАЛ на легких мыши без использования специальных инструментов или оборудования. Жидкость БАЛ выделяют путем введения катетера в трахею мышей с терминальной анестезией, через которые в бронхиолы вводят солевой раствор. Приложенная жидкость мягко убирается, чтобы максимизировать извлечение флюида BAL и минимизировать усилия сдвига. Этот метод позволяет сохранить жизнеспособность, функцию и структуру клеток в дыхательных путях и БАЛ. Для получения более глубокого понимания состояния болезни легких могут применяться многочисленные методики. В этом случае широко используемым методом идентификации и подсчета различных типов иммунных клеток являетсяГде проточная цитометрия комбинируется с панелью выбора флуоресцентно меченных клеточных поверхностно-специфических маркеров. Представленная здесь процедура BAL также может быть использована для анализа инфекционных агентов, жидких компонентов или ингаляционных частиц в легких мыши. Воздушные пути встречаются многочисленные оскорбления, которые могут привести к воспалению, инвазии патогенов или злокачественные трансформации. Эпителиальные клетки, которые выстилают просвет легких, образуют один из главных барьеров тела млекопитающих. Вместе с альвеолярными макрофагами они предотвращают проникновение экологических угроз в системную систему через дыхательные пути. Примеры таких угроз включают органические и неорганические химикаты, бактерии и вирусы. Аналогичным образом, могут быть разработаны специальные иммунизации или терапевтические вмешательства, направленные на легкие. Во всех этих случаях тщательный анализ вызванного ответа важен для понимания, вмешательства или предотвращения биологических процессов, происходящих в дыхательной системе. Бронхоальвеолярный лаваж БАЛ является бесценным методом для анализа таких ответов, поскольку полученные в результате образцы содержат важную информацию о воспалительных реакциях, иммунных механизмах и прогрессировании инфекционных заболеванийЧто может произойти в легочных дыхательных путях 1 , 2. Используя БАЛ, можно изучать инфильтрирующие клетки. Это контрастирует с переваренными легкими, которые дают «грязнее» клеточную популяцию, со многими мертвыми и липкими клетками. БАЛ выполняют путем введения солевого раствора в конечные бронхиолы и последующего восстановления этого раствора. Полученное решение можно затем использовать для количественной оценки и фенотипического анализа резидентных легких и инфильтрирующих воспалительных клеток. Этот метод часто применяется для изучения клеточного притока в моделях заболеваний дыхательных путей, таких как астма, хроническая обструктивная болезнь легких ХОБЛ и модели инфекционных заболеваний. Помимо клеточного состава, молекулярный состав легочных дыхательных путей также отражается в жидкости БАЛ. Для анализа этого фермент-связанный иммуносорбентный анализ ELISA , иммуноблот и одновременный анализ нескольких цитокинов с помощью массива цитокинов могут бытьпроводится для оценки наличия цитокинов и хемокинов. БАЛ является хорошо признанным методом для изучения притока воспалительных клеток в воспалительных моделях животных респираторных болезней. Наблюдение измененного клеточного притока например, повышенные уровни лимфоцитов, эозинофилы, нейтрофилов или может привести к более глубокому пониманию болезни и может быть объективным параметр для оценки эффективности терапевтического вмешательства. Точная и воспроизводимая интерпретация BAL клеточного анализа требует, чтобы БАЛ выполнена правильно, и что собранные жидкости и обрабатываются должным образом. Термин «бронхиальная промывание» была введена более восьмидесяти лет назад Ститтой 3. В году Myrvik получены альвеолярных макрофагов из промывной жидкости кролика легких 3. BAL теперь широко используемый метод для анализа и мониторинга легких в модели мыши, однакоRe по-прежнему не представляет собой стандартную процедуру БАЛ в научной литературе 4 , 5. Кроме того, существует, вероятно, так много способов выполнить БАЛ, поскольку существуют исследовательские лаборатории, использующие технику 3 , 6 , 7 , 8 , 9 , 10 , Важно, что данные, полученные из БАЛ, представляют собой целое мышечное легкое, а не только часть легкого. Такая вариативность затрудняет интерпретацию и сравнение результатов между различными испытаниями. Здесь описана базовая, недорогая и воспроизводимая процедура BAL, которая позволяет собирать клеточную и растворимую фракцию, присутствующую в просвете дыхательных путей мыши. Короче говоря, катетер помещают в открытую трахею oFa - терминально обезболиваемая мышь. С катетером соединен шприц, и в легкие вводится буферный солевой раствор, содержащий этилендиаминтетрауксусную кислоту ЭДТА. Пробу легкого отбирают путем мягкой повторной промывки солевого раствора с помощью плунжера. Отрицательное давление, прилагаемое на этом этапе, минимально, чтобы предотвратить обрушение дыхательных путей. После сбора полученная БАЛ должна быть обработана далее для перечисления и идентификации клеток методом проточной цитометрии. Все эксперименты на мышах и всех животных протоколах были одобрены комитетом по этике университета Гента номера LA и EC Анализ различных типов клеток в жидкости BAL с помощью проточной цитометрии. Одна из возможностей заключается в анализе абсолютного и относительного клеточного состава жидкости БАЛ путем проведения проточной цитометрии. Цель этой статьи - разработать технику BAL. Проточная цитометрия является специализированной методикой сама по себе. Рекомендуется читать специализированные статьи по методу проточной цитометрии 13 , 14 , 15 , 16 , Антитела, связанные с флуорофором tшлю распознают поверхностные антигены таблица 1 , специфические для конкретного типа клеток ов используются. При использовании стратегии стробирования, можно определить Т-клетки, макрофаги, дендритные клетки, В-клетки, эозинофилы, нейтрофилы и в клеточной фракции BAL. Таблица 1: Выбор иммунных антигенов клеточной поверхности. В этой таблице приведен список поверхностных эпитопов, используемых для характеристики различных типов клеток. Комбинации нескольких маркеров должны будут надежно определить конкретный тип клеток. Таблица 2. Перечень элементов управления должны быть включены. В этой таблице представлены все необходимые элементы управления для точной интерпретации полученных результатов. Таблица 3: Обзор лазеров и фильтры проточного цитометра , используемых в данном исследовании. После проведения БАЛ с 3х1 мл буферного солевого раствора необходимо восстановить объем между 2 и 3 мл. Эта жидкость БАЛ может быть дополнительно проанализирована для характеристики клеточного и неклеточного содержимого. Для исследования присутствия цитокинов и хемокинов могут быть выполнены ELISA 19 , иммуноблот 20 и одновременный анализ множественных цитокинов матрицей 21 цитокиновых гранул. Кроме того, альбумин и общее содержание белка в этой жидкости могут быть определены В качестве примера, эта рукопись описывает, как анализировать клеточный состав жидкости БАЛ методом проточной цитометрии. Таблицу 1 и таблицу материалов. Также применялся фиксируемый жизнеспособный краситель. Используя стратегию стробирования, основанную на дифференциальной экспрессии антигенов на поверхностях различных популяций клеток рис. Во-первых, обломки и дублеты были отфильтрованы по параметрам прямого и бокового рассеяния. Жизнеспособный краситель облегчал стробирование на живых клетках. Затем идентифицировали высокие клетки CD11c и низкие клетки CD11c. ВОстальная клеточная популяция, нейтрофилы и эозинофилы были идентифицированы на основе экспрессии CD11b и Ly-6G маркера, соответственно. Подсчет шариков добавляли для определения абсолютных чисел клеток разных популяций клеток путем сравнения отношения событий шарика к событиям ячейки Эти счетные бусины были идентифицированы на основе их свойств прямого и бокового рассеивания рис. В таблице 4 приведен обзор абсолютных чисел клеток разных популяций клеток в жидкости БАЛ наивной мыши и мыши, которую стимулировали в течение 24 ч с помощью 5 мкг липополисахарида. Рисунок 1: Стратегия стробирования для проточной цитометрической детекции макрофагов, дендритных клеток, Т-клеток, В-клеток, нейтрофилов и эозинофилов N BAL Fluid. Клетки выделяли из мышей через 24 ч после интратрахеальной инстилляции липополисахарида. Подсчет шариков и ячеек был определен по свойствам прямого и бокового рассеяния. В клеточном вороте отдельные клетки идентифицировали с использованием прямого и бокового разброса. В этой последней популяции были идентифицированы клетки, которые были живыми. Затем идентифицировали высокие клетки CD11c и CD11c с низкими клетками. В оставшейся популяции клеток нейтрофилы и эозинофилы были идентифицированы на основе экспрессии CD11b и Ly-6G, соответственно. Нажмите здесь, чтобы посмотреть Более крупная версия этого рисунка. БАЛ является полезным методом получения цитологической и биохимической информации в ответ на инфекции или наркотики. Первоначально БАЛ использовался для управления чрезмерным выделением слизи у пациентов, страдающих токсичностью фосгена 3. В настоящее время этот метод используется у людей для исследования патогенеза, диагностики и лечения заболеваний легких 3 , В лабораторных животных БАЛ обычно используется для мониторинга воспалительных реакций, иммунных механизмов и инфекционных процессов, которые происходят в легочных дыхательных путях 1 , 2. Для изучения воспалительного клеточного узора в моделях респираторных заболеваний БАЛ должен сопровождаться абсолютным и дифференциальным подсчетом клеток. В дополнение к абсолютному номеру ячейки также интересны относительные номера ячеек. Например, модели ремонта и рака показывают vКоличество клеток в клетках BAL увеличивается незначительно. В этой модели полезно оценить клеточный состав. Используя окраску клеток в сочетании с световой микроскопией, на основе морфологии 25 , 26 , 27 , 28 , 29 , 30 можно идентифицировать различные типы клеток, такие как эозинофилы, нейтрофилы, макрофаги и лимфоциты. Проточная цитометрия может использоваться для конкретных оценок, например для идентификации различных фенотипов Т-клеток 7 , В дополнение к идентификации различных популяций инфильтрирующих клеток, неклеточный состав легких можно исследовать с использованием БАЛ. Методы, такие как ELISA, иммуноблот, массив бусинок цитокинов, иммуногистохимия и количественная полимеразная цепная реакция выполняются на БАЛ-жидкости для определения цитокинов, ростаФакторов и других воспалительных компонентов. Для определения повреждения легких можно также измерить уровни общего белка и лактатдегидрогеназы в жидкости БАЛ 32 , С развитием новых диагностических инструментов геномная и протеомная характеристика компонентов БАЛ станет возможной в ближайшем будущем. Сочетание расширяющихся вычислительных возможностей и высокопроизводительных технологий экспрессии генов позволит определить профили экспрессии определенных генов для различных болезненных состояний. Выполнение этих методик на БАЛ может обеспечить образцы экспрессии генов и белков, чтобы идентифицировать важные молекулы, вовлеченные в различные фазы легочных заболеваний. Основным ограничением данных, полученных из жидкости БАЛ, является отсутствие сопоставимости между различными исследованиями 3 , 9. Чтобы иметь возможность сравнивать каждую пробу BAL, необходимо, чтобы стандартизировать тип промывной жидкости, который привил, сайт инстилляции, и фракцию, которая должна быть проанализирована для клеточного и не клеточного состава. Существует значительные различия в количестве лаважа фракций между различными испытаниями, колеблется от одного до 14 раз 34, 35, Эта разница может оказать влияние на ожидаемую величину общего числа клеток в легких. Важно знать, какая BAL фракция жидкости содержит большинство клеток. Песни и др. Тем не менее, другие сообщения о том , что второе промывание содержал больше клеток , чем первый 37, 38 Неклеточный состав жидкости BAL содержит ценную информацию о состоянии здоровья легких 33, 39, Изменения в разведении БАЛА способствует разнице в квантификации растворимой фракции и, следовательно, к различиям в результатах между испытаниями. Для того, чтобы получить репрезентативную выборку BAL для анализа, некоторые технические соображения имеют решающее значение. Один из них заключается в проведении надлежащего обезболивания. Это очень важно, чтобы проверить футовый рефЛекс мыши для обеспечения терминала седации. Это важно не только по этическим соображениям, но и потому, что трудно установить и сохранить катетер в правильном положении, если мышь не правильно наркозом. Второй важный фактор является техническим положением катетера в трахее. Когда катетер вставлен слишком глубоко, это может привести к повреждению структуры легких. Дистальный конец катетера не должен достигать легких во время процедуры BAL. Катетер также должен быть стабилизирован и обвязывается с хлопчатобумажной нитью. Если катетер не стабилизируется, вводят физиологический раствор может течь вверх в полость носа, а не в легких. Во время инъекции и аспирации солевого раствора, важно, чтобы держать катетер устойчивым. Данные, полученные из БАЛА должен представлять все мышиные легких. Поэтому важно , чтобы привить адекватный объем солевого буфера то есть 3 мл, разделяли на 3 аликвоты по 1 мл каждый. Между выходом клеток и выходом жидкости BAL нет линейной зависимости. Важно аккуратно собирать раствор, массируя грудную клетку мыши. Если сдвигающие силы слишком сильны, жизнеспособность, функция и структура клеток в дыхательных путях и жидкости БАЛ могут быть скомпрометированы. Если аспирированная жидкость не видна в шприце, осторожно перемещайте катетер глубже или выше в трахее. Особое внимание следует уделить конкретным аспектам обработки и анализа БАЛ. Это позволит максимизировать информацию, сохраненную в образцах BAL. После БАЛ клетки находятся в среде с низким содержанием питательных веществ в солевом растворе. Поэтому очень важно обрабатывать образцы в течение 1 часа после отбора проб БАЛ. Если требуется длительное хранение, требуется использование питательной среды. Чтобы сохранить жизнеспособность клеток, избегайте труб, которые способствуют прилипанию клеток к поверхности. Избегать centrifugation клеточных суспензий на скоростях, которые могут поставить под угрозу целостности клеток или для предотвращения взмучивания равномерного считываемых клеток БАЛА. LVH является научным сотрудником на кафедре биомедицинской молекулярной биологии университета Гента. Van Hoecke, L. To learn more about our GDPR policies click here. If you want more info regarding data storage, please contact gdpr jove. You have already requested a trial and a JoVE representative will be in touch with you shortly. If you need immediate assistance, please email us at subscriptions jove. Please enjoy a free 2-hour trial. In order to begin, please login. You have unlocked a 2-hour free trial now. All JoVE videos and articles can be accessed for free. To get started, a verification email has been sent to email institution. Please follow the link in the email to activate your free trial account. If you do not see the message in your inbox, please check your 'Spam' folder. Your access has now expired. Provide feedback to your librarian. If you have any questions, please do not hesitate to reach out to our customer success team. Login processing Для измерения уровня белка в жидкости БАЛ рекомендуется добавлять ингибиторы протеазы, чтобы предотвратить активность протеазы в жидкости БАЛ. Катетер Сделайте катетер, вставив иглу 23 G в прозрачную пластиковую полиэтиленовую трубку 21 G внутренний диаметр: 0,58 мм, наружный диаметр: 0, мм и длина: 0,5 см. Также могут быть использованы предварительно подготовленные катетеры. Рекомендуется использовать инъекционную анестезию вместо ингаляционной анестезии, так как вдыхаемая анестезия может влиять на содержание БАЛ. CO 2 , например, оказывает влияние на pH крови и, следовательно, на перераспределение различных соединений Выполнение бронхоальвеолярного лаважа BAL Введение катетера в трахею Усыпите мышь путем внутрибрюшинной инъекции смертельной дозы анестетика барбитурата короткого действия с использованием иглы 26 G. Чтобы подтвердить правильную смертельную анестезию, зажмите заднюю лапу мыши пинцетом, чтобы проверить рефлекс стопы. Поместите животное на спину на хирургическую пластину и зафиксируйте мышь, придавив конечности. Сделайте разрез в области шеи возле трахеи с помощью скальпеля. Откройте кожу, чтобы обнажить слюнные железы. Отделите слюнные железы, используя щипцы, чтобы обнажить стерниоидную мышцу. Вставьте мышцу вокруг трахеи, используя щипцы, чтобы обнажить трахею. Поместите хлопковую нить под трахею с помощью клещей. Тщательно проколоть середину обнаженной трахеи между двумя кольцами хряща иглой 26 G. Будьте осторожны, чтобы не повредить трахею. Вставьте катетер около 0,5 см в трахею. Убедитесь, что катеTer не вставляется слишком глубоко в трахею, так как это может привести к повреждению структуры легких. Стабилизируйте катетер, завязывая трахею вокруг катетера, используя хлопковую нить, установленную на этапе 2. Если катетер недостаточно завязан, вводимый сбалансированный солевой раствор может течь в верхнюю часть дыхательного тракта, а не вниз в легкие. Соберите промывную жидкость Загрузите шприц объемом 1 мл 1 мл стерильного сбалансированного солевого раствора со мкМ ЭДТА. Аспирируйте раствор мягко, массируя грудную клетку мыши. Если аспирационная жидкость не видна в шприце, осторожно вставьте катетер немного дальше или вверх по трахее. Снимите шприц с иглы и перенесите восстановленную промывочную жидкость в 15 мл пробирку, помещенную на лед. Повторите шаги 2. Если целью является анализ не клеточного содержимого, рекомендуется сосредоточить собранные образцы, когда есть проблемы с чувствительностью. Держите клеточный осадок, чтобы проанализировать клеточный приток в легких. Ресуспендируют осадок клеток в мкл ACK лизирующего буфера. Инкубируйте в течение 2 мин при комнатной температуре. Чтобы уменьшить вариацию, вызванную лизисами эритроцитов, этот шаг не должен выполняться более 2 мин. Отбросьте супернатант и повторно суспендируйте клетки в адекватном объеме PBS для последующего анализа см. Объем PBS зависит от последующего исследования, которое будет выполняться. Кластер дифференцировки 11b CD11b Экспрессируется на поверхности многих лейкоцитов, включая моноциты, нейтрофилы, естественные клетки-киллеры, гранулоциты и макрофаги. SiglecF lveolar макрофаги и эозинофилы. MHCII Обычно встречаются только на антигенпрезентирующих клетках, таких как дендритные клетки, мононуклеарных фагоцитов и В-клеток. CD19 В-лимфоцитов антиген Ly-6G Маркер для моноцитов, гранулоцитов и нейтрофилов Таблица 1: Выбор иммунных антигенов клеточной поверхности. Поверхность Окрашивание клеток Примечание: Это ImpoRtant, чтобы включить все критические контролы для анализа проточной цитометрии. Требуются три набора трубок см. Таблицу 2 : 1 пробирки, содержащие образцы; 2 пробирки с клетками BAL для каждого антитела-флуорофора для получения единичных пятен; Это позволяет определять напряжения для каждого канала на проточном цитометре; И 3 пробирки с шариками для каждого антитела-флуорофора для получения единичных пятен; Это необходимо для определения матрицы компенсации. Таблицу 2. Необходимо определить оптимальное рабочее разбавление для каждого антитела перед экспериментом. Ресуспендируют клетки в 50 мкл смеси антител для образца и добавляют 50 мкл соответственно разбавленного антитела к критическим контрольным образцам. Окрашивание может быть выполнено в луночном, u-образном пластине. Это позволяет легко уменьшить объем пятен aго запуск значительного количества образцов. Жидкость над осадком сливают. Повторное приостановить клетки в PBS до конечного объема мкл. Примечание: Этот конечный объем зависит от минимального объема цитометр потока может получить доступ. Это может немного отличаться между машинами. Используйте образцы и элементы управления для анализа проточной цитометрии. Примечание: Для определения абсолютного количества клеток различных клеточных популяций, счетные шарики должны быть добавлены. При использовании вперед и боковое рассеивание, считая шарики могут быть идентифицированы с помощью проточной цитометрии см рисунок 1. Впоследствии, абсолютное количество клеток в образце можно рассчитать путем сравнения тысE отношение бортовых событий к событиям ячеек. Необходимо использовать проточный цитометр с соответствующими лазерами и фильтрами для обнаружения сигнала. В таблице 3 представлен обзор лазеров и фильтров, необходимых для исследования, описанного в этой рукописи. Для получения дополнительной информации о проточном цитометрическом анализе см. Adan et al. Настройте первичные ворота на основе прямого и бокового разброса, исключая мусор и дублеты см. Отрегулируйте напряжение и компенсацию спектрального перекрытия с помощью однокрасочных клеток и шариков. Эти настройки различны для каждого проточного цитометра, и их необходимо проверять перед каждым экспериментом. FИли правильного анализа потока, напряжения в прямом и боковом рассеянии являются критическими. Правильный прямой и боковой разброс может помочь в идентификации и подтверждении идентичности анализируемых клеток. Чтобы определить эти напряжения, сначала следует запустить образец без окраски. Настройте флуоресцентные вентили для поверхностного антигена см. Клеточная популяция Абсолютное число клеток у наивных мышей Абсолютное число клеток у LPS-стимулированных мышей макрофаги Дендритные клетки Т-клетки В-клетки нейтрофилы эозинофилы Таблица 4: Представление Результаты анализа проточной цитометрии на BAL-жидкости наивных и LPS-стимулированных мышей. Play Video. Cite this Article Van Hoecke, L. Before you can use the favorites feature you must sign in or create an account. Continue with Shibboleth or Forgot Password? Please enter your email address so we may send you a link to reset your password. You might already have access to this content! Please enter your Institution or Company email below to check. Please enter an institutional email address. Check access. Create Account. Forgot Password? Reset Password. Phone number. Request trial. Thank You! A JoVE representative will be in touch with you shortly. Waiting for verification email? Please click here to activate your free 2-hour trial. If you do not wish to begin your trial now, you can log back into JoVE at any time to begin. Enable Javascript for audio controls. Get cutting-edge science videos from J o VE sent straight to your inbox every month. We use cookies to enhance your experience on our website. Continue Learn more Close. Высокая экспрессия на большинстве дендритных клеток, но и на моноциты, макрофаги, нейтрофилы и некоторых В-клеток. Экспрессируется на поверхности многих лейкоцитов, включая моноциты, нейтрофилы, естественные клетки-киллеры, гранулоциты и макрофаги. Обычно встречаются только на антигенпрезентирующих клетках, таких как дендритные клетки, мононуклеарных фагоцитов и В-клеток.
Героин бесплатные пробы Гент
Купить Лирику 300 Морозовск закладкой
Героин бесплатные пробы Гент
Бронхоальвеолярное спазмы легких у мышей для анализа воспалительной клеточной инфильтрации
Героин бесплатные пробы Гент